“DETECCIÓN DE MICROORGANISMOS 

PARASITARIOS Y CARACTERIZACIÓN 

DE LESIONES HISTOPATOLÓGICAS EN 

LA CONCHA DE ABANICO (Argopecten 

purpuratus) PROCEDENTES DE ÁNCASH- 

PERÚ DURANTE LOS PERIODOS DE 

VERANO E INVIERNO” 

 

 

 
TESIS PARA OPTAR EL GRADO DE MAESTRO EN 

SANIDAD ACUÍCOLA 

 

 
ADHEMIR AYRTON VALERA ANDRADE 

 

 
Lima- Perú 

2018 



 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 

 
 

ASESOR DE TESIS: 
 

PhD. Mg. MV. Marcos Enrique Serrano Martínez 



 

AGRADECIMIENTOS 

A Dios, por darme fortaleza en todos los momentos difíciles de mi vida y darme el 

consuelo para continuar y nunca rendirme. 

A la Dra. Nieves Sandoval, por la paciencia, amabilidad, el cariño y todo el 

conocimiento transmitido. 

A la Dra. Karin Lohrmann, por guiarme desde la elaboración del proyecto, 

siempre tener la disposición de ayudarme y por todos sus conocimientos 

brindados hacia mi persona, sin ella esta tesis no podría haber sido realizada. 

Al Dr. Luis Llanco, por apoyarme de manera constante en la tesis así como por 

todas las enseñanzas en este período académico. 

Al Dr. Enrique Serrano, por los consejos, las facilidades y el apoyo en la 

elaboración de la tesis. 

A Cleila, Rosa V., Claudia, Alessandra y Yovan por toda la ayuda en el muestreo 

y el procesamiento en el laboratorio. 

A todos mis amigos de mi promoción de la maestría por su amistad y por su 

apoyo en los momentos de dificultad. 

A la señora Charito, por su gentileza y guía en todos los procesos 

administrativos. 



DEDICATORIA 
 
 

A mi madre Melva, por el apoyo y el soporte en toda mi historia de vida, sin ella 

no podría haber logrado todos mis objetivos. 

A mi papá Julio Cesar, por guiarme desde el cielo y enseñarme el camino 

correcto desde niño, siempre te tengo presente. 

A mis hermanos Anais y Edson, por acompañarme y motivarme a seguir a pesar 

de las dificultades. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

FUENTES DE FINANCIAMIENTO 
 

Fondo Nacional de Desarrollo Científico, Tecnológico y de Innovación 

Tecnológica (FONDECYT-CIENCIA ACTIVA) al Programa de SANIDAD 

ACUÍCOLA (contrato 230-2015 FONDECYT. Concurso PROGRAMAS DE 

MAESTRÍA EN UNIVERSIDADES PERUANAS”) de la UPCH. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 

ÍNDICE 

 
 

 

RESUMEN  

ABSTRACT 

LISTA DE CUADROS 
 

LISTA DE FIGURAS 

 

I. INTRODUCCIÓN  1 

II. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA  3 

III. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA  4 

3.1 Actividad comercial de los moluscos bivalvos  4 

3.1.1 Producción Nacional  5 

3.1.1.1 Pesca  5 

3.1.1.1.1 Desembarque  5 

3.1.1.1.2 Desenvolvimiento  5 

3.1.1.1.3 Mercado interno  5 

3.1.1.2 Acuicultura  6 

3.1.1.2.1 Exportaciones  7 

3.1.1.1 Mercado Nacional  7 

3.2 Concha de abanico  9 

3.2.1 Clasificación taxonómica  9 

3.2.2 Distribución  9 

3.2.3 Morfología  10 

3.2.4 Alimentación  10 

3.2.5 Reproducción  10 

3.2.6 Condiciones de cultivo  11 

3.2.7 Tipos de cultivo de concha de abanico  11 

3.2.7.1 Cultivo de fondo  11 

3.2.7.2 Cultivo suspendido  12 

 



3.3 Bahía de Samanco 12 

3.4 Anatomía, fisiología e histología de los principales órganos de los 

moluscos bivalvos  13 

3.4.1 Anatomía y fisiología de los principales órganos de los 

moluscos bivalvos  13 

3.4.2 Histología de los principales órganos de los moluscos bivalvos 

  15 

3.4.2.1 Branquias  15 

3.4.2.2 Músculo aductor  15 

3.4.2.3 Gónadas  16 

3.4.2.4 Manto  16 

3.4.2.5 Glándula digestiva  16 

3.4.2.6 Intestino  16 

3.4.2.7 Riñones o nefridios  17 

3.5 Sistema Inmune de los moluscos  17 

3.5.1 Inmunidad celular  17 

3.5.2 Inmunidad humoral  17 

3.5.2.1 Lisozimas  17 

3.5.2.2 Lectinas  18 

3.5.2.3 Proteínas de choque térmico  18 

3.5.2.4 Sistema profenol-oxidasa  18 

3.5.2.5 Péptidos antimicrobianos  18 

3.6 Enfermedades de moluscos bivalvos y antecedentes  18 

3.7 Principales enfermedades de moluscos bivalvos  20 

3.7.1 Enfermedades bacterianas  20 

3.7.1.1 Infecciones por bacterias del género Vibrio  20 

3.7.1.2 Infecciones por bacterias del género Pseudomonas  21 

3.7.1.3 Infecciones por procariotas del tipo Rickettsia  21 

3.7.2 Enfermedades virales  22 

3.7.2.1 Birnavirus  22 

3.7.2.2 Herpesvirus  23 

3.7.2.3 Iridovirus  23 

3.7.3 Enfermedades Parasitarias  23 



3.7.3.1 Perkinsus sp.  24 

3.7.3.2 Bonamia sp.  24 

3.7.3.3 Phylum Paramyxea  25 

3.7.4 Enfermedades Por Metazoos  26 

3.7.4.1 Poliquetos  26 

3.7.4.2 Turbelarios  27 

3.7.4.3 Cestodos larvales  27 

3.7.4.4 Trematodos digeneos  28 

3.7.4.5 Nematodos larvales  29 

3.8 Estado sanitario de moluscos bivalvos en el país  29 

IV. JUSTIFICACIÓN DEL ESTUDIO  31 

V. OBJETIVOS DEL ESTUDIO  32 

5.2 Objetivo general  32 

5.3 Objetivos específicos  32 

VI. METODOLOGÍA  33 

6.1 Diseño del estudio  33 

6.2 Población y muestra  33 

6.3 Procedimiento y técnicas  34 

6.3.1 Toma de muestra  34 

6.3.2 Evaluación de los parámetros fisicoquímicos del agua  35 

6.3.3 Determinación de la biometría  35 

6.3.4 Evaluación macroscópica  36 

6.3.5 Estudio Histopatológico  36 

6.3.6 Plan de análisis  38 

6.3.7 Consideraciones éticas  39 

VII. RESULTADOS  40 

7.1 Parámetros fisicoquímicos del agua  40 

7.2 Biométricos  44 

7.3 Observaciones macroscópicas  48 

7.4 Histopatológicos  50 

6.3.8 Branquias  50 

6.3.9 Gónada masculina  56 

6.3.10 Gónada femenina  59 

6.3.11 Músculo aductor  64 

6.3.12 Intestino  67 

6.3.13 Nefridios  70 



2  

6.3.14 Glándula digestiva  64 

6.3.15 Manto  78 

7.5 Análisis estadístico  86 

VIII. DISCUSIÓN  90 

IX. CONCLUSIONES  102 

X. RECOMENDACIONES  103 

XI. BIBLIOGRAFÍA  104 
 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 



3  

 

 

Lista de tablas  

Tabla 1. Cosecha de conchas de abanico procedentes de la actividad de 

acuicultura en el 2006-2015 (PRODUCE, 2016) (Anuario Estadístico 

Pesquero y Acuícola, 2015).  

Tabla 2. Diferencia de grados de lesiones en tejidos según su extensión en la 

muestra (Reimshuessel et al., 1992) 

Tabla 3. Evaluación Mensual de los parámetros fisicoquímicos del agua de la 

Bahía de Casma en Áncash-Perú evaluados en la temporada de 

verano. 

Tabla 4. Evaluación Mensual de los parámetros fisicoquímicos del agua de la 

Bahía de Casma en Áncash-Perú evaluados en la temporada de 

invierno. 

Tabla 5.  Promedio y desviación estándar de los parámetros fisicoquímicos del 

agua de la bahía de Casma en Áncash-Perú evaluados en la temporada 

de verano e invierno. 

Tabla 6. Promedio de datos biométricos de las conchas de abanico de Áncash-

Perú tomando en cuenta el lugar de procedencia (ambiente natural y 

producción), así como la temporada (verano e invierno).  

Tabla 7. Datos biométricos extremos (mayor y menor) de las conchas de abanico 

en Áncash-Perú tomando en cuenta el lugar de procedencia (ambiente 

natural y producción), así como la temporada (verano e invierno).  

Tabla 8. Hallazgos a nivel macroscópico de las conchas de abanico en Áncash-

Perú tomando en cuenta el lugar de procedencia (ambiente natural y 

producción), así como la temporada (verano e invierno).  

Tabla 9.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 



2  

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 10.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambientes naturales de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 11.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de invierno. 

Tabla 12.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambientes naturales de Áncash - Perú en período de invierno, 

Tabla 9.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 10.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambientes naturales de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 11.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de invierno. 

Tabla 12.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambientes naturales de Áncash - Perú en período de invierno, 

Tabla 13.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su 



3  

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 14.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

verano.  

Tabla 15.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

invierno.  

Tabla 16.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

verano.  

Tabla 17.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 18.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 19.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su 



4  

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

invierno.  

Tabla 20.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

invierno. 

Tabla 21.  Frecuencia de alteraciones histológicas de músculo aductor y su grado 

de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 22.  Frecuencia de alteraciones histológicas de músculo aductor y su grado 

de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 23.  Frecuencia de alteraciones histológicas de músculo aductor y su grado 

de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

invierno.  

Tabla 24.  Frecuencia de alteraciones histológicas de músculo aductor y su grado 

de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente ambiente natural de Áncash - Perú en período de invierno. 

Tabla 25.  Frecuencia de alteraciones histológicas de intestino y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 



5  

de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 26.  Frecuencia de alteraciones histológicas de intestino y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambiente natural de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 27.  Frecuencia de alteraciones histológicas de intestino y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de invierno. 

Tabla 28.  Frecuencia de alteraciones histológicas de intestino y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambiente natural de Áncash - Perú en período de invierno. 

Tabla 29.  Frecuencia de alteraciones histológicas de los nefridios y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 30.  Frecuencia de alteraciones histológicas de los nefridios y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambiente natural de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 31.  Frecuencia de alteraciones histológicas de los nefridios y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de invierno. 

Tabla 32.  Frecuencia de alteraciones histológicas de los nefridios y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de ambiente natural de Áncash - Perú en período de invierno. 

Tabla 33.  Frecuencia de alteraciones histológicas de glándula digestiva y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 



6  

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 34.  Frecuencia de alteraciones histológicas de glándula digestiva y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 35.  Frecuencia de alteraciones histológicas de glándula digestiva y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

invierno.  

Tabla 36.  Frecuencia de alteraciones histológicas de glándula digestiva y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

invierno. 

Tabla 37.  Frecuencia de alteraciones histológicas de manto y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

Tabla 38.  Frecuencia de alteraciones histológicas de glándula digestiva y su 

grado de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

verano. 

Tabla 39.  Frecuencia de alteraciones histológicas de manto y su grado de 

afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedente 

de centros de producción de Áncash - Perú en período de invierno. 



7  

Tabla 40. Frecuencia de alteraciones histológicas de glándula digestiva y su grado 

de afección en la concha de abanico (Argopecten purpuratus) 

procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de 

invierno. 

Tabla 41. Resultados de histología de las principales alteraciones encontradas en 

los distintos órganos evaluados. 

Tabla 42. Resultados Ji cuadrado, para comparar prevalencias de agentes 

parasitarios encontrados en tejidos de conchas de abanico, tomando en 

cuenta el origen de los individuos y la estación del año.  

Tabla 43. Resultados Ji cuadrado, para comparar prevalencias de lesiones 

encontrados en tejidos de conchas de abanico, tomando en cuenta el 

origen de los individuos y la estación del año.  

 

Lista de Figuras  

Figura 1. Producción (en millones de toneladas) de bivalvos procedentes de la 

pesca y de la acuicultura durante el decenio 1991-2000. Fuente: 

Anuarios de Estadísticas de Pesca de la FAO (2006)  

Figura 2. Venta Interna de Recursos marítimos procedentes de la actividad de 

Acuicultura en el año 2015. Fuente: Anuario Estadístico Pesquero y 

Acuícola, 2015.  

Figura 3. Exportación de recursos hidrobiológicos procedentes de la actividad de 

acuicultura según especie (PRODUCE, 2016) Fuente: Anuario 

Estadístico Pesquero y Acuícola, 2015.   

Figura 4. Exportación de concha de abanico procedente de la acuicultura y país 



8  

de destino (PRODUCE, 2016). Fuente: Anuario Estadístico Pesquero 

y Acuícola, 2015.  

Figura 5. Concha de abanico (Argopecten purpuratus, Lamarck 1989). Fuente: 

FAO (2007).  

Figura 6. Órganos internos de Argopecten purpuratus. Flecha azul, órgano 

reproductor femenino y flecha negra, órgano reproductor masculino. 

Fuente: Helm et al. (2006) 

Figura7. Ciclo biológico de la concha de abanico. Fuente: 

http://conchasdeabanicoupc.blogspot.pe/2010/05/estados-de-

desarrollo_04.html. (2010). 

Figura 8. Relación de la temperatura y el oxígeno disuelto en los meses de verano 

e invierno del agua de la bahía de Casma en Áncash-Perú. 

Figura 9. Promedio y desviación estándar de los parámetros fisicoquímicos en 

todos los meses.  

Figura 10. Relación de la altura valvar y el peso total con el Factor de condición 

(FC) según los diferentes grupos de procedencia.  

Figura 11. Porcentaje (%) de hallazgos a nivel macroscópico de las conchas de 

abanico en Áncash-Perú tomando en cuenta el lugar de procedencia 

(ambiente natural y producción), así como la temporada (verano e 

invierno). 

Figura 11 (A). Hallazgos a nivel macroscópico. Manchas blanquecinas en 

gónadas de concha de abanico (flechas azules) (Argopecten 

purpuratus).  

Figura 11 (B). Hallazgos a nivel macroscópico. Hydroides sp. encontrado en 

http://conchasdeabanicoupc.blogspot.pe/2010/05/estados-de-desarrollo_04.html
http://conchasdeabanicoupc.blogspot.pe/2010/05/estados-de-desarrollo_04.html


9  

concha de abanico (Argopecten purpuratus).  

Figura 11 (C). Hallazgos a nivel macroscópico. Perforaciones en el interior de las 

valvas en concha de abanico (flechas rojas) (Argopecten purpuratus). 

Figura 11 (D). Hallazgos a nivel macroscópico. Polydora sp. extraído de una 

concha de abanico (Argopecten purpuratus). 

Figura 12. Hiperplasia del epitelio branquial (Circulo negro). H&E 400X.  

Figuras 13 (RLOs) Organismos tipo Rickettsiales en tejido branquial (Círculo 

rojo).  Áreas de necrosis del tejido (Flechas azules). H&E 400X.  

Figuras 14 (RLOs) Organismos tipo Rickettsiales en tejido branquial (Círculo 

rojo).  Áreas de necrosis del tejido (Flechas azules). H&E 400X.  

Figuras 15 (RLOs) Organismos tipo Rickettsiales en tejido branquial (Círculo 

rojo).  Áreas de necrosis del tejido (Flechas azules). H&E 400X.  

Figuras 16 (RLOs) Organismos tipo Rickettsiales en tejido branquial (Círculo 

rojo).  Áreas de necrosis del tejido (Flechas azules). H&E 400X.  

Figura 17. Tremátodo entre los filamentos branquiales (Círculo amarillo). Áreas 

de necrosis del tejido (Flechas azules). Leve infiltración hemocítica 

(Círculo verde). H&E 400X. 

Figura 18. Infiltración hemocítica (círculos verdes) y RLOs dentro del filamento 

branquial (Círculo rojo). H&E 400X. 

Figura 19. Infiltración hemocítica (círculos verdes), RLOs dentro del filamento 

branquial (Círculo rojo) y necrosis del epitelio. H&E 400X. 

Figura 20. Infiltración hemocítica (Círculos verdes). H&E 400X. 

Figura 21. Infiltración hemocítica (Círculos verdes). H&E 400X. 

Figura 22. Infiltración hemocítica (Círculos verdes). H&E 400X. 



10  

Figura 23. Infiltración hemocítica (Círculos verdes). H&E 400X. 

Figura 24. Infiltración hemocítica en Gónada sexual masculina (Círculo verde). 

H&E 400X. 

Figuras 25 (A). Atrofia de la gónada masculina. (Se observan zonas donde no 

existe tejido). H&E 100X. 

Figuras 25 (B). Atrofia de la gónada masculina. (Se observan zonas donde no 

existe tejido). H&E 400X.  

Figura 26. Áreas de Necrosis (flechas azules) en Gónada masculina. H&E 400X. 

Figura 27. Infiltración hemocítica (Círculo verde) en gónada femenina. H&E 

400X. 

Figuras 28 (A). Atrofia de la gónada masculina. (Se observan zonas donde no 

existe tejido). H&E 100X  

Figuras 28 (B). Atrofia de la gónada masculina. (Se observan zonas donde no 

existe tejido). H&E 400X. 

Figura 29. Necrosis de la gónada femenina. H&E 400X. 

Figura 30. Tremátodo (Círculo azul) y atrofia en la gónada femenina. H&E 400X. 

Figura 31. Tremátodo (Círculo azul) y atrofia en la gónada femenina. H&E 400X. 

Figura 32. Ooquiste de Nematopsis sp. (Círculo naranja) en músculo aductor e 

infiltración hemocítica (Círculo verde). H&E 400X. 

Figura 33. Ooquistes de Nematopsis sp. (Círculos anaranjados) en músculo 

aductor. H&E 400X. 

Figura 34. Tejido necrótico y células vacuoladas de color basófilos (Círculo 

morado).  H&E 400X. 

Figura 35. Áreas de necrosis (flechas azules) e infiltración hemocítica (Círculo 



11  

verde). H&E 100X.  

Figura 36. Ooquistes dentro de la luz intestinal (Circulo anaranjado). H&E 400X. 

Figura 37. Necrosis del intestino (flechas azules). H&E 400X. 

Figura 38. Tremátodo adherido a la pared intestinal (Circulo anaranjado). H&E 

400X. 

Figura 39. Ooquiste de Nematopsis sp. en nefridios (circulo). H&E 400X. 

Figura 40. Áreas de necrosis en nefridios (flechas azules). H&E 400X. 

Figura 41. Infiltración hemocítica en nefridios (círculos verdes). H&E 400X. 

Figura 42. Concreciones dentro de las células que conforman los nefridios. H&E 

400X. 

Figura 43. Concreciones dentro de las células que conforman los nefridios. H&E 

400X. 

Figura 44 (A). Granuloma (círculo celeste) y necrosis epitelial en glândula 

digestiva. H&E 100X.  

Figura 44 (B). Granuloma (círculo celeste) y necrosis epitelial en glândula 

digestiva. H&E 400X.  

Figura 45. Tremátodo en glândula digestiva. H&E 400X. 

Figura 46. Severa necrosis en glândula digestiva. H&E 400X. 

Figuras 47. Severa necrosis en glándula digestiva. H&E 400X. 

Figura 48. Infiltración hemocítica (círculos verdes) y granuloma en formación 

(círculo celeste) (circulo). H&E 400X. 

Figura 49 (A). RLOs (Círculos rojos), necrosis en glándula digestiva e 

infiltración hemocítica (Círculo verde). H&E 100X.  

Figura 49 (B). RLOs (Círculos rojos), necrosis en glándula digestiva e infiltración 



12  

hemocítica (Círculo verde). H&E 400X. 

Figura 50. RLOs (Círculos rojos) y necrosis en glándula digestiva. H&E 400X. 

Figura 51. Severa infiltración hemocítica (Círculos verde) y necrosis en glándula 

digestiva. H&E 400X. 

Figura 52. Infiltración hemocítica (Círculo verde) en manto. H&E 400X. 

Figura 53. RLOs (Círculo rojo) y áreas de necrosis (flechas azules). H&E 400X. 

Figura 54 (A). Tremátodo en manto (círculo azul), se observa como los 

hemocitos se alargan para arrestar al parásito (flechas anaranjadas). 

H&E 100X.  

Figura 54 (B). Tremátodo en manto (círculo azul), se observa como los 

hemocitos se alargan para arrestar al parásito (flechas anaranjadas). 

H&E 400X. 

Figura 55. Tremátodo en manto (círculo azul). H&E 400X. 

Figura 56. Tremátodo en manto (círculo azul). H&E 400X. 

Figura 57. Granuloma en manto (círculo). H&E 400 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 



13  

RESUMEN 
 

La acuicultura en el Perú se ha incrementado en los últimos años, donde destaca el 

cultivo de conchas de abanico (Argopecten purpuratus). En nuestro país se conoce 

poco de los organismos que afectan a esta especie. El objetivo del estudio es 

detectar a los agentes parasitarios y describir las lesiones histopatológicas en la 

concha de abanico procedentes de Áncash en periodo de verano e invierno. Se 

muestrearon 360 conchas de abanico en total, de las cuales, la mitad provino de la 

estación de verano (180) y la otra mitad de invierno (180), que a su vez también 

provinieron de centros de producción y la otra mitad (90) del medio natural. Las 

muestras fueron conservadas en fijador de Davidson y luego procesadas para el 

estudio histológico. Se realizó la prueba ji cuadrado para el análisis estadístico. 

Los hallazgos histológicos encontrados en branquias y glándula digestiva fueron 

similares, se encontró en los 4 grupos Rickettsial Like Organisms (RLOs) y en 

todos los grupos se observó infiltración hemocítica y necrosis de los tejidos, la 

prevalencia de RLOs estuvo asociada a la temporada del año. Con respecto a los 

nefridios, se pudo encontrar que todos los grupos presentaron concreciones y en 

caso del manto, se observó infiltración hemocítica, granulomas, tremátodos en el 

grupo de conchas de abanico silvestres en verano; la prevalencia de los 

tremátodos estuvo asociada a la procedencia de los animales. Se concluye que 

existen microorganismos parasitarios y distintos tipos de lesiones tisulares en 

conchas de abanico procedentes del medio natural y centros de producción de 

Ancash- Perú en periodos de verano e invierno.  

Palabras clave: Argopecten purpuratus, histología, organismos parasitarios, 

Áncash, Rickettsial Like Organisms. 



14  

 

ABSTRACT 

 

Aquaculture in Peru has increased in recent years, where cultivation of fan shells 

(Argopecten purpuratus) stands out. In our country, little is known about 

organisms affect this specie. The objective of this study is to detect parasitic 

agents and describe the histopathological lesions in the fan shell from Ancash 

during the summer and winter periods. A total of 360 scallops were sampled, of 

which half came from summer season (180) and the other from winter (180), 

which in turn also came from production centers and the other half (90) of natural 

environment. Samples were preserved in Davidson's fixative and then processed 

for histological study. The chi-squared test was performed for statistical analysis. 

Histological findings found in gills and digestive glands were similar, Rickettsial 

Like Organisms (RLOs) and hemocytic infiltration and necrosis of the tissues was 

observed in all four groups; the prevalence of RLOs was associated to season of 

the year. With regard to nephridios, it was possible to find that all the groups 

presented concretions and in the case of the mantle, hemocytic infiltration, 

granulomas, and trematodes were observed in the group of wild scallop shells in 

summer; the prevalence of trematodes was associated to origin of animals. We 

conclude that there are parasitic microorganisms and different types of tissue 

lesions in fan shells from the natural environment and production centers of 

Ancash-Peru in summer and winter periods. 

 

Key words: Argopecten purpuratus, histology, parasitic organisms, Ancash, 

Rickettsial Like Organisms.  



1  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

I.INTRODUCCIÓN 

 

La acuicultura en los últimos años ha tomado vital importancia, en el cual se incluye 

la explotación y comercio de moluscos bivalvos. Esta actividad es una parte 

importante en la actividad acuícola a nivel global. En nuestro país destaca el cultivo 

de concha de abanico, siendo Piura y Áncash los dos lugares con mayor producción 

a nivel nacional. Estos animales son procesados y exportados como producto 

alimenticio principalmente a África, Europa y Oceanía. 

Uno de los principales desafíos de la producción de moluscos bivalvos es el 

conocimiento, prevención y control de las enfermedades. El estrés producido por 

cambios fisicoquímicos en el agua o por el hacinamiento puede provocar la 

aparición y el desarrollo de diversas enfermedades, las cuales son transmitidas de 

manera muy rápida debido a que el agua actúa como medio de infección. Diversos 

agentes causan daño directamente a la concha de abanico como bacterias, virus y 

parásitos, los cuales afectan y causan lesiones en los tejidos de estos animales 

acuáticos, dentro de este grupo destacan los agentes parasitarios los cuales en 

algunos casos pueden llegar a provocar altas mortalidades y es el motivo por el cuál 

un grupo de ellos se encuentra en la lista de agentes causantes de enfermedades de 

reporte obligatorio para la OIE. 



2  

En el presente trabajo, se realizó la detección de microorganismos parasitarios y el 

estudio histopatológico en el molusco bivalvo concha de abanico (Argopecten 

purpuratus) proveniente de la bahía de Casma en Áncash- Perú durante períodos de 

verano e invierno. 



3  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

II. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 

 

 
El cultivo de conchas de abanico es una actividad económica importante, en el 

periodo de enero a Setiembre del 2013 se obtuvo una producción de 45,284 

toneladas (Flores y Mazza, 2014). La acuicultura en Perú se ha incrementado en 

20% durante los últimos años, donde destaca la producción de esta especie 

(Bernedo, León, Montero y Quispe, 2015). Lamentablemente, se conoce poco 

acerca de los parásitos que afectan a los moluscos en América Latina (Cáceres- 

Martínez y Vásquez-Yeomans, 2008) y cualquier brote de enfermedad podría poner 

en peligro esta industria. Es por ello necesario el conocimiento de parásitos y 

patógenos que afectan a esta especie marina de importancia comercial para el país. 



4  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 
 

III. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 

 

 
3.1 ACTIVIDAD COMERCIAL DE LOS MOLUSCOS BIVALVOS 

 

Los moluscos bivalvos, donde se incluyen a las ostras, mejillones, almejas y vieras, 

constituyen una parte importante de la producción acuícola a nivel mundial. Se ha 

observado un considerable aumento en la producción de bivalvos durante los años 

de 1991 – 2000, pasando de los 6,3 millones de toneladas desembarcadas a más del 

doble con 14 204 152 toneladas métricas, incluyendo a especies de pesca y 

acuicultura. Está producción desde el año 1991 se ha venido incrementando incluso 

llegando a superar a la pesca (FAO, 2006). 

 

 
Figura 1. Producción (en millones de toneladas) de bivalvos procedentes de la pesca y de la 

acuicultura durante el decenio 1991-2000. Fuente: Anuarios de Estadísticas de Pesca de la FAO 

(2006) 



5  

Los moluscos bivalvos son ideales para la acuicultura, debido a que su alimentación 

está basada en algas, las cuales que se encuentran en aguas marinas. Aunque el 

cultivo de estos animales data de hace varios siglos, los últimos avances 

tecnológicos han permitido maximizar la producción del cultivo de moluscos 

bivalvos (Helm, Bourne y Lovatelli, 2006). 

3.1.1 Producción Nacional 

 

3.1.1.1 Pesca 

 

3.1.1.1.1 Desembarque 

 

La concha de abanico representó un 0.6% de todas las especies desembarcadas en 

el año 2015, este año se colectó en total 30 396 TM procedentes de la actividad 

extractiva, es decir, no provenientes de la acuicultura. Gran parte del total de este 

recurso marino (28 904 TM) fue congelada, la cantidad restante (1 492 TM) fue 

vendida como producto fresco y utilizado para consumo humano directo (Bernedo 

et al., 2015). 

3.1.1.1.2 Desenvolvimiento 

 

Chimbote es uno de los lugares que presenta mayor desembarque de recursos 

hidrobiológicos marítimos, esta ciudad posee el 11.28% del total de los recursos 

desembarcados en el 2015 (Bernedo, et al., 2015). 

3.1.1.1.3 Mercado Interno 

 

En el mercado mayorista pesquero de Ventanilla todos los años ha habido ingreso 

y expendio de concha de abanico, situación que no ocurre en elde Villa María del 

triunfo, donde el ingreso de este producto es muy escaso llegando en algunos años 

a no ofrecer (Bernedo et al., 2015). 



6  

3.1.1.2 Acuicultura 

 

La cosecha de conchas de abanico procedente de la acuicultura desde el año 2006 

supera las 10 000 toneladas métricas (tabla 1). El año 2015, en el departamento de 

Áncash se cosecharon 10 833,393 TM (47.61%), en Piura 11 891,53 TM (52.26%) 

y en Ica 303,06 TM (0.13%) (Anuario Estadístico Pesquero y Acuícola, 2015). 

 

Tabla 1. Cosecha de conchas de abanico procedentes de la actividad de acuicultura en el 2006-2015 

(Bernedo et al., 2015). 

 

Año 2006 2007 2008 2009 2010 2011 2012 2013 2014 2015 

Concha de abanico 
(TM) 

12 337 18 518 14 802 16 047 58 101 52 213 24 782 67 694 55 096 23 029 

 

 
Con respecto a la venta interna, en el año 2015 fue 2 000,04 TM, representando un 

4.24% (Figura 2) del total de recursos marítimos de la acuicultura que fueron 

vendidos al mercado nacional (Bernedo et al., 2015). 

 

 

 

Figura 2. Venta Interna de Recursos marítimos procedentes de la actividad de Acuicultura en el año 

2015. Fuente: Anuario Estadístico Pesquero y Acuícola, 2015. 



7  

3.1.1.2.1 Exportaciones 

 

La concha de abanico se ubica como el segundo producto acuícola con mayor 

exportación, representando el 24.17% del total de todas las especies que son 

exportadas (Figura. 3) (Bernedo et al., 2015). 

 
 

Figura 3. Exportación de recursos hidrobiológicos procedentes de la actividad de acuicultura según 

especie (PRODUCE, 2015) Fuente: (Bernedo et al., 2015). 

 
 

La concha de abanico se exporta principalmente a Europa, África y Oceanía (Figura 

4). El principal destino europeo es Francia y en el 2015 se exportó 3 852,51 TM 

(Bernedo et al., 2015). 

3.1.1.3 Mercado nacional 

 

La demanda de concha de abanico en el marcado nacional es muy poca cuando se 

compara con el mercado internacional, donde los principales países a los cuales se 

exporta dicho producto son: Francia y Estados Unidos, es decir gran parte de la 

producción es vendida a estos países y solo una pequeña parte se queda en nuestro 

país y es distribuida en los terminales pequeros, supermercados y mercados 

municipales (Kanagusuku, 2009). 



8  

 

 
 

 
 

 
 

Figura 4. Exportación de concha de abanico procedente de la acuicultura y país de destino 

(PRODUCE, 2015). Fuente: (Bernedo et al., 2015). 



9  

3.2 CONCHA DE ABANICO (Argopecten purpuratus) 

 

3.2.1 Clasificación Taxonómica 

Reino : Animal 

Phylum : Mollusca 

Clase  : Bivalva 

Orden  : Anisomyaria 

Familia  : Pectinidae 

Género   : Argopecten 

Especie : Argopecten purpuratus 

 

(Lamarck, 1819) 
 

 
Figura 5. Concha de abanico (Argopecten purpuratus, Lamarck 1989). Fuente: FAO (2007). 

 

 

Recibe diferentes nombres como: Concha de abanico, viera, peine, ostión del norte, 

almeja voladora. 

3.2.2 Distribución 

 

La concha de abanico, se encuentra en las costas del Pacífico, desde Paita (Perú) 

hasta el Norte de Chile en Coquimbo (Álamo y Valdivieso, 1987). Tiene como 

hábitat el sustrato arenoso, areno fangoso y de conchuela y se les puede encontrar 

hasta una profundidad de 40 metros debajo del nivel del mar (Uriarte, 2008). 



10  

3.2.3 Morfología 

 

Este pectinido es caracterizado por presentar una concha orbicular, con valvas 

desiguales, cuya valva izquierda es mucho más convexa que la derecha. A su vez 

presenta costillas radiales con un número variable de 23 a 26 por valva, la cual 

presentan una coloración rosácea. (Kanagusuku, 2009). 

3.2.4 Alimentación 

 

Estos animales son exclusivamente filtradores, se alimentan filtrando gran cantidad 

de fitoplancton, en épocas donde el fitoplancton desaparece, casi la totalidad de los 

moluscos bivalvos migra o muere por inanición. Las especies de las cuales se 

alimenta está conformada principalmente por microalgas pardas o diatomeas, 

destacando: Isochrysis sp., Chaetoceros sp., Skeletonema sp., Navicula sp., 

Nitzschia sp., Thalassiosira sp., Melosita sp., Cyclotella sp., entre otras 

(Kanagusuku, 2009). 

3.2.5 Reproducción 

 

Es una especie hermafrodita, quiere decir que un mismo individuo posee los dos 

sexos: masculino y femenino, pero su funcionalidad no es suficiente, por ello, la 

producción de gametos sexuales es de forma alternada y su ciclo reproductivo de 

manera continua. Las gónadas reciben el nombre común de coral, este incluye el 

órgano sexual masculino (color blanco) y el órgano sexual femenino (color naranja) 

(figura 6) (Peteiro, Filgueira y Fernández, 2007). 



11  

 

 

Figura 6. Órganos internos de Argopecten sp. (Flecha azul) 

órgano reproductor femenino. (Flecha negra) órgano 

reproductor masculino. Fuente: Helm et al. (2006) 

 
 

Su primera madurez sexual se puede dar alrededor de 

 

los 10 a 12 meses de edad con tallas de 50 mm donde podrían desovar de 1 a 10 

millones de óvulos, la producción de los óvulos está relacionada directamente con 

su crecimiento, es decir, animales de tallas más grandes pueden llegar a desovar 10 

a 40 millones de óvulos. El desove generalmente se inicia expulsando al exterior 

los espermatozoides y luego los óvulos (Kanagusuku, 2009). 

Su ciclo biológico comprende 4 etapas: huevo; larva, en esta fase se presentan 3 

estadios (trocofera, veliger y preveliger), juvenil y adulto (Kanagusuku, 2009). 

3.2.6 Condiciones de cultivo 

 

Las condiciones necesarias para el cultivo de concha de abanico son una 

temperatura que va desde los 13°C a 20°C, dándole un medio confortable, aunque 

también puede llegar a soportar extremos de 7°C hasta 28°C, en cuanto a valores 

de oxigeno lo ideal es de 0.2 a 8 ml/l, un pH de 6.8 a 7.9 y una salinidad óptima de 

35 partes por millón (Kanagusuku, 2009). 

3.2.7 Tipos de cultivo de concha de abanico 

 

3.2.7.1 Cultivo de fondo 

 

En esta técnica de cultivo se utiliza el fondo marino como soporte para el cultivo. 

Se realiza el cultivo en un corral de malla que tiene forma circular o rectangular en 

el fondo y cuya parte basal va pegada al fondo se le hace como una especie de 



12  

bolsillo donde se colocan piedras para dar soporte y evitar que se mueva 

(Kanagusuku, 2009). 

3.2.7.2 Cultivo suspendido 

 

Hay diversas técnicas, pero la más usada es el long-line, el cual consta de una línea 

de cordel que tiene boyas de diferentes tipos y tamaños para contrarrestar el peso 

de las conchas de abanico, las cuales se encuentran en linternas. Las líneas poseen 

cordeles amarrados a los muertos, los cuales son estructuras pesadas que provocan 

que las líneas ingresen al fondo del mar (Kanagusuku, 2009). 

3.3 BAHÍA DE SAMANCO 

 

La bahía de Samanco se encuentra ubicado en la provincia de El Santa en la región 

Ancash, es una de las bahías más importantes , comprendiendo un área de 

aproximadamente 6900 ha. La circulación de sus aguas es muy lenta con 

velocidades de 1.2 a 13.9 cm/ s y en un sentido horario. En esta bahía se realiza 

pesca artesanal donde destacan principalmente son concha de abanico, marucha, 

navajuela, calamar, pata de mula, pejerrey, machete y lisa. Esta bahía debido a sus 

características ambientales, batimetría y sustrato brinda condiciones favorables para 

el desarrollo de cultivo de especies marinas, es por ello que un 30% del área ha sido 

otorgada a concesiones para el cultivo y explotación de concha de abanico, pero 

debido a ello surgió un problema debido a que los centros de producción ubicados 

en esta bahía están produciendo desechos orgánicos. La actividad humana está 

generando residuos orgánicos como resultado de la propia explotación productiva 

como el desvalvado, la limpieza de las linternas, sino que además algunas empresas 

no cuentan con lugares apropiados para acopiar los residuos producidos por el 

propio personal de trabajo y todo ello es arrojado al mar. Esto es indicación del 



13  

mal manejo de residuos sólidos por parte de las concesionarias dedicadas a la 

maricultura. A su vez también se han encontrado concentraciones de metales 

pesados que no superaron niveles alarmantes como cadmio, plomo y cobre en el 

agua y en los organismos marinos, pero en los sedimentos superficiales se encontró 

cadmio y cobre que si superaron niveles estándar. Estos metales estarían llegando 

al mar de la bahía de Samanco por la actividad antropogénica, como es el uso de 

los combustibles en la maricultura, pesca industrial y artesanal (IMARPE, 2008; 

García, Orozco, Gonzales y Flores, 2015; Veyalarce, 2016). 

3.4 ANATOMÍA, FISIOLOGÍA E HISTOLOGÍA DE LOS PRINCIPALES 

ORGANOS DE MOLUSCOS BIVALVOS. 

3.4.1 Anatomía y fisiología de los principales órganos de moluscos bivalvos 

 

Las branquias están formadas por filamentos, los cuales están cubiertos por cilios. 

Este órgano está involucrado en la respiración y la alimentación de las especies. En 

la respiración ya que aquí se realiza el intercambio gaseoso, con respecto a la 

alimentación estas estructuras permiten atrapar las partículas que se encuentran en 

suspensión en el ambiente marino y luego son transportadas hacia el orificio bucal 

con ayuda de los cilios que poseen (Peteiro et al., 2007). 

El estómago recibe el alimento ingerido y se da inicio al proceso digestivo, posee 

una glándula digestiva que digiere partículas más pequeñas mientras el intestino se 

encarga de las partículas más grandes. El intestino tiene una abertura en el segmento 

final por donde son expulsados los desechos (Peteiro et al., 2007). 

Las almejas y los mejillones presentan dos porciones de músculos aductores y 

reciben el nombre de dimiarias, para el caso de vieiras y ostras, estas solo poseen 

un único músculo aductor, el cual se encuentra ubicado en posición central, estas 



14  

especies reciben el nombre de monomiarias. En las especies que solo poseen un 

solo músculo se puede apreciar fácilmente la división, la gran porción es llamada 

de músculo rápido y se contrae para cerrar las valvas y la porción más pequeña 

conocida como músculo de cierre, mantiene las valvas en posición cuando se ha 

cerrado (Helm et al., 2006). 

Los moluscos tienen una circulación abierta, quiere decir que el tipo de sangre no 

se encuentra definida por vasos sanguíneos como venas y arterías. La sangre de 

estos animales recibe el nombre de hemolinfa y es responsable de transportar 

alimentos, oxígeno y desechos del metabolismo (Peteiro et al., 2007). 

El sistema nervioso de estos animales está formado por tres pares de ganglios y un 

par de largos cordones nerviosos. Los ganglios cerebro pleurales envían nervios a 

los palpos, al musculo aductor anterior y al manto. Los ganglios viscerales 

proyectan nervios al tubo digestivo, corazón, branquias, manto, musculo aductor 

posterior. El ganglio pedio inerva el pie (Peteiro et al., 2007). 

Los órganos encargados de la sensibilidad se encuentran alrededor del manto y son: 

los ocelos, que son órganos fotorreceptores y el osfradio, que detecta la calidad de 

agua del ambiente en el que habitan (Peteiro et al., 2007). 

La gran mayoría de las especies de moluscos bivalvos son hermafroditas. Las 

gónadas sexuales son liberadas al exterior es por ello que la fecundación es externa 



15  

Figura 7. Ciclo biológico de la concha de abanico. Fuente: 

http://conchasdeabanicoupc.blogspot.pe/2010/05/estados-de-desarrollo_04.html. (2010). 

 

 

 

3.4.2 Histología de los principales órganos de moluscos bivalvos 

 

3.4.2.1 Branquias 

 

Como todas las mucosas con función respiratoria, las branquias están formadas por 

dos tipos de células: las vibrátiles y las glandulares mucosas, las cuales se asemejan 

a las células caliciformes de los vertebrados. La proporción entre estas dos células 

es variable y depende de la salinidad del agua, es por ello que es necesario tener 

presente este factor variable. Estos dos tipos de células se encuentran sobre una 

lámina basal desarrollada, la cual presenta alteraciones y migraciones de elementos 

celulares en casos de parasitosis causadas por tremátodos, copépodos y protozoos 

(Bozzo, Durfort, Poquet y Sagristà, 2015). 

3.4.2.2 Músculo aductor 

 

El músculo de los bivalvos presenta dos porciones que difieren en cuanto a 

histología y funcionalidad, fibras musculares y fibras lisas. Una parte llamada 

“músculo lento” posee fibras musculares lisas y la otra parte conformada por fibras 

que poseen estrías recibe el nombre de “músculo rápido” (Chantler, 2016). 

http://conchasdeabanicoupc.blogspot.pe/2010/05/estados-de-desarrollo_04.html
http://conchasdeabanicoupc.blogspot.pe/2010/05/estados-de-desarrollo_04.html


16  

3.4.2.3 Gónadas 

 

Estos órganos constituyen cerca del 80% del peso corporal y se reducen después de 

la liberación de sus gametos. Entre los túbulos seminíferos y los folículos ováricos 

hay una cantidad de tejido conjuntivo laxo, las células adipogranulosas, una gran 

cantidad de vasos hemolinfáticos y gonoductos ciliados y sinuosos que se 

distribuyen por toda la gónada. Gónada femenina, compuesta por folículos 

ováricos, contienen un número grande de oocitos, los cuales están rodeados por 

tejido conjuntivo laxo y algunas células adipogranulosas. Gónada masculina, está 

compuesta por compartimentos en donde tiene lugar la formación de los 

espermatozoides. Entre los compartimentos se observa la presencia de tejido con- 

juntivo (Bozzo et al., 2015). 

3.4.2.4 Manto 

 

Está recubierto por un epitelio ciliado con células mucosas y en la zona interna se 

localiza el tejido conjuntivo alveolar y haces de fibras musculares (Bozzo et al., 

2015). 

3.4.2.5 Glándula digestiva 

 

Presenta un aspecto glandular tubular ramificado. Presenta numerosos túbulos 

digestivos, separados por tejido conjuntivo alveolar (Bozzo et al., 2015). 

3.4.2.6 Intestino 

 

Presenta epitelio ciliado que descansa sobre una lámina basal (lb), en la zona apical 

del epitelio se observan los cilios. Los túbulos digestivos de la glándula digestiva 

se localizan alrededor del intestino (Bozzo et al., 2015). 



17  

3.4.2.7 Riñones o Nefridios 

 

Conformado por los túbulos renales que a su vez están formados por un epitelio de 

células con aspecto alveolar (Bozzo et al., 2015). 

3.5 SISTEMA INMUNE DE MOLUSCOS 

 

Los moluscos bivalvos tienen mecanismos de defensa muy sofisticados, de los 

cuales se conoce solo algunos. En ese sentido juegan un papel importante los 

hemocitos, que emigran desde los vasos hemolinfáticos y se dirigen por el tejido 

conjuntivo hasta llegar a los focos infecciosos. Existen reacciones inflamatorias 

como la fagocitosis, formación de una cubierta hemocítica y procesos de 

encapsulación (Bozzo et al., 2015). 

El sistema inmune está provisto por barreras físicas como el mucus y la propia 

concha, así como el sistema inmune innato celular y humoral (Moreira, 2015). 

3.5.1 Inmunidad celular 

 

Esta respuesta está directamente relacionada con los hemocitos, los cuales tiene 

como función eliminar las células o partículas extrañas mediante la fagocitosis o 

por medio de las enzimas liberadas por los lisosomas. Los hemocitos también tienen 

como función: formación de agregados para atrapar a las partículas no propias, la 

producción y regulación de los factores humorales (Ratcliffe, Rowley, Fitzgerald y 

Rhodes, 1985) o el aislamiento del patógeno mediante encapsulación (Feng, 1988). 

3.5.2 Inmunidad humoral 

 

Conformado por proteínas o glicoproteínas que se encuentran la linfa o en los 

propios hemocitos (Moreira, 2015). Sus principales componentes son: 

3.5.2.1 Lisozima 

 

Enzimas liberadas en respuesta a infecciones de tipo bacteriana (Zhao et al., 2010) 



18  

3.5.2.2 Lectinas 

 

Proteínas de unión a carbohidratos y que tienen capacidad de opsonización y 

aglutinación, también favorecen a la fagocitosis y activación del complemento 

(Humphries y Yoshino, 2003). 

3.5.2.3 Proteínas de choque térmico 

 

Son sintetizadas como respuesta a factores de estrés y es posible que modulen la 

apoptosis y afecten la transcripción de genes involucrados en la respuesta 

inmunitaria (Parcellier, Gurbuxani, Schmitt, Solary y Garrido, 2003; Guo et al., 

2009). 

3.5.2.4 Sistema profenol-oxidasa 

 

Relacionado a la fagocitosis, encapsulación y producción de factores líticos. 

(Cerenius, Lee y Söderhäll, 2008). 

3.5.2.5 Péptidos antimicrobianos 

 

Proteínas pequeñas con un papel clave en la inmunidad innata. Alteran la 

permeabilidad de la membrana de los agentes patógenos, causando la lisis de sus 

células. 4 grupos de péptidos antimicrobianos en bivalvos: defensinas, mitilinas, 

mitimicinas y miticinas (Li, Parisi, Parrinello, Cammarata y Roch, 2011). Se han 

descrito otros nuevos grupos de péptidos antimicrobianos: grandes defensinas, 

mitimacinas (Gerdol, De Moro, Manfrin, Venier y Pallavicini, 2012), miticusinas 

(Liao, Wang, Liu, Fan, Sun y Shen, 2013) y mitiquitinas (Qin et al., 2014). 

3.6 ENFERMEDADES DE MOLUSCOS BIVALVOS Y ANTECEDENTES 

Los bivalvos son afectados por bacterias, virus, clamidias, fases larvarias de 

tremátodos y protozoos, así como adultos de copépodos. Los órganos preferidos 



19  

para infectar son: el tracto digestivo, las branquias, la glándula hepatopancreática, 

las gónadas y musculatura (Bozzo et al., 2015). 

Es importante describir que existen moluscos muy parasitados pero que 

macroscópicamente presentan un aspecto normal por lo cual es necesaria una 

observación vital al microscopio de una pequeña sección de los órganos para poder 

notar la presencia de los parásitos y las alteraciones tisulares que ha provocado 

(Bozzo et al., 2015). 

La investigación en enfermedades de moluscos ha estado enfocada principalmente 

a los estudios de morfología del patógeno y su ultraestructura, los efectos de 

factores medioambientales sobre los patógenos y su infectividad, así como en el 

desarrollo de técnicas de diagnóstico basadas en biología molecular. 

Uno de los principales desafíos a los que se enfrenta el cultivo de moluscos bivalvos 

es el control y prevención de enfermedades. En cultivos intensivos es donde se 

encuentran animales más susceptibles, estos moluscos suelen estar más expuestos 

a la aparición y desarrollo de diferentes enfermedades debido al aumento en las 

densidades y al estrés generado que provoca una rápida transmisión del agente 

(Figueras y Novoa, 2011). La mayoría de las enfermedades de moluscos de reporte 

obligatorio son enfermedades causadas por protozoos (Figueras y Novoa, 2011). 

Con el fin de controlar la presentación de los distintos patógenos de declaración 

obligatoria se llevan a cabos programas de monitoreo basados en diversas técnicas 

de diagnóstico aprobadas por la OIE (Figueras y Novoa, 2011). 

Las enfermedades de moluscos bivalvos se han estudiado tradicionalmente 

empleando citología e histología, las cuales han sido muy buenas para detectar 

posibles patógenos, específicamente los parásitos protozoos asociados a 



20  

mortalidades o alteraciones en la población afectada a su vez también permite 

detectar lesiones y la interacción del patógeno con el sistema inmune (Figueras y 

Novoa, 2011). 

3.7 PRINCIPALES ENFERMEDADES DE MOLUSCOS BIVALVOS 

 

3.7.1 Enfermedades Bacterianas 

 

Uno de los grandes problemas que causan gran daño a la acuicultura de moluscos 

bivalvos son los repetidos casos de mortalidad, muchos de estos casos se deben a 

agentes bacterianos, destacando entre ellos a miembros del género Vibrio (Figueras 

y Novoa, 2011). 

3.7.1.1 Infecciones por bacterias del género Vibrio 

 

Este género bacteriano incluye a muchos de los patógenos de acuicultura marina. 

Este agente microbiano está relacionado a los problemas en cultivos larvarios de 

bivalvos. 

Los signos que se observan son distención y desprendimiento del manto, así como 

la aparición de estrías en el cuerpo, ocasionando mortalidad por encima del 70%. 

La enfermedad se manifiesta a las 4 – 5 horas post infección, con signos clínicos 

como: reducción de la movilidad y tendencia a permanecer quiescentes, con el velo 

extendido, recibe el nombre de necrosis bacilar. A las 8 horas se observa muerte 

con necrosis granular en los individuos (Figueras y Novoa, 2011). 

La especie V. alginolyticus ha sido identificada como responsable de provocar 

mortalidad en Nodipecten subnodosus, Atrina Maura (Luna-Gonzales y Maeda- 

Martínez, 2004) y Ruditapeus decussatus (Gomez-León, Villamil, Lemos, Novoay 

y Figueras, 2005). 



21  

La especie V. angillarum se considera patógena para Argopecten purpuratus 

(Riquelme, Hayashida, Toranzo, Vilches y Chávez, 1995) mientras V. splendidus 

han sido descrito como patógeno de Crasosstrea virginica (Sugumar, Nakai, Hirata, 

Matsubaray y Muroga, 1998) y Ruditapeus decussatus (Gomez- León et al., 2005). 

3.7.1.2 Infecciones por bacterias del género Pseudomonas 

 

Esta bacteria afecta principalmente al estadio larvario de los moluscos, provocando 

un desarrollo anormal y mortalidad. 

Este agente microbiano se ha aislado con bacterias del género Vibrio sp. lo que 

sugiere la posibilidad de una asociación conjunta, se cree que los que inician la 

enfermedad son los Vibrios sp. y estos permiten el ingreso secundario de bacterias 

con alta capacidad de metabolizar el sustrato, como son las Pseudomonas (Figueras 

y Novoa, 2011). 

3.7.1.3 Infecciones por procariotas de tipo Rickettsia 

 

La presencia de microorganismos procariotas ha sido descrita en diferentes 

invertebrados acuáticos, haciendo pensar que son los posibles causantes de 

mortalidad en estos animales, pero durante mucho tiempo ha sido controversial si 

las infecciones causadas por estos agentes producen un daño significativo o 

relevante en la salud del hospedador. 

En marzo de 1987 ocurrió una mortalidad masiva, de aproximadamente 40%, en la 

especie Pecten maximus en Francia, ese estudio reveló la presencia de infecciones 

por este agente en las branquias (Le Gall, Chagot, Mialhe y Grizel 1988). Estos 

microorganismos aparecen formando colonias intracelulares basófilas, pudiendo 

llegar a causar obstrucción de los vasos sanguíneos (Le Gall et al., 1988). 



22  

Estos organismos tipo Rickettsia en moluscos son parásitos obligados, forman 

inclusiones citoplasmáticas, las cuales se pueden observar mediante histología. Se 

ha observado que también existen inclusiones con carácter eosinófilo e incluso en 

un mismo hospedador se puede observar inclusiones con ambas tinciones (Meyers, 

Burreson, Barber y Mann, 1991; Norton, Shepherd, Abdon-Naguit y Lindsay, 1993; 

Wen, Kou y Chen, 1994). Se sugiere que podría tratarse de diferencias entre 

especies o una diferencia entre sus estadios (Sun y Wu, 2004). Las rickettsias no 

matan a las células de su hospedador por producción de toxinas sino por destrucción 

celular (Winkler, 1990; Romero, Thumbull y Jiménez, 2000), esto se relaciona con 

los resultados de algunos trabajos realizados con moluscos, los cuales describen 

células infectadas con estos organismos tipo rickettsiales, así como la ruptura de las 

células para la liberación de su progenie. (Villalba, Carballal, López, Cabada y 

Corral, 1999; Figueras y Novoa, 2011). 

3.7.2 Enfermedades Virales 

 

Los bivalvos al ser organismos filtradores pueden acumular patógenos, algunos de 

los cuales pueden ser virus, estos microbios no solo les afectan a ellos también 

pueden causar daño a otros animales (Figueras y Novoa, 2011). 

3.7.2.1 Birnavirus 

 

Los birnavirus infectan a distintas especies, desde vertebrados hasta moluscos e 

insectos (Delmas et al., 2005). Es un virus con genoma RNA de doble cadena. Los 

moluscos pueden actuar como reservorios ya que se ha aislado birnavirus de 

animales aparentemente sanos (Rivas et al. 1993), incluso se encontró que los virus 

se mantienen en los hemocitos durante el período de verano para en invierno 

replicarse e invadir las células parenquimales (Kitamura, Jung y Suzuki, 2000). 



23  

3.7.2.3 Herpesvirus 

 

Es el virus de molusco más estudiado y del cual se ha secuenciado su genoma 

(Davison, 2005). Los herpersvirus son virus DNA, tienen una forma poligonal y se 

replican en el núcleo de las células a la que invaden. Estos virus están asociados a 

mortalidad de larvas de Crassostrea gigas en Nueva Zelanda (Hine, Wesney y Hay, 

1992) y en Estados Unidos (Burge, Griffin y Friedman, 2006). Se han encontrado 

tres tipos genéticos distintos de herpesvirus en un estudio patológico llevado en 

Crassotrea ariakensis en Asia (Moss et al., 2007). 

Las larvas afectadas por infecciones con estos virus muestran una reducción en la 

alimentación y el nado, además se observan lesiones en el manto y velo. Las 

especies adultas no son tan susceptibles a las infecciones por herpesvirus, sin 

embargo, se cree que podrían actuar como portadores asintomáticos, ya que se ha 

encontrado la presencia en ostras adultas (Arzul et al., 2002). 

3.7.2.4 Iridovirus 

 

Los iridovirus son virus con genoma DNA y presentan forma icosaédrica, están 

asociados a mortalidades de moluscos bivalvos en varios países, por ejemplo, en 

Francia, se describió una enfermedad de las branquias causada por el virus de la 

necrosis branquial (GNV, gill necrosis virus) en Crassotrea angulata (Comps, 

Bonami, Vago y Capillo, 1976; Comps y Bonami 1977, Comps, Herbaut y 

Fougerousse, 1999). Otra enfermedad relacionada con el iridovirus es: la 

enfermedad del velo de las larvas (OVVD, oyster velar virus disease) (Figueras y 

Novoa, 2011). 

3.7.3. Enfermedades Parasitarias 



24  

3.7.3.1 Perkinsus sp. 

 

El género Perkinsus, comprende parásitos protozoarios de moluscos bivalvos 

marinos, se encuentran distribuidos a nivel mundial en América, África, Europa, 

Asia y Oceanía, existen especies dentro de este grupo que ocasionan elevadas 

mortalidades (Figueras y Novoa, 2011). 

Existen 7 especies dentro del género: siendo P marinus y P olseni, incluidos en la 

lista de las especies de reporte obligatorio (OIE, 2017). 

Los trofozoítos que se encuentran en el hospedador, cuando este muere, se 

transforman en hipnoesporas y cuando estas últimas se transfieren al agua de mar 

se produce la zooesporulación que conduce a la liberación de las zooesporas 

móviles. Los tres estadios de ciclo de vida (trofozoíto, hipnoespora y zooespora) 

son capaces de producir infección en moluscos sanos (Figueras y Novoa, 2011). 

Los métodos de diagnóstico disponible incluyen a la histología, incubación en caldo 

tioglicolato y técnicas moleculares (Figueras y Novoa, 2011). 

3.7.3.2 Bonamia sp. 

 

Los parásitos del género Bonamia agrupan a parásitos protozoarios que infectan a 

varias especies de ostras. Parte de su ciclo de vida incluye a células uninucleadas 

de pequeño tamaño, llamadas microcélulas, que invaden y proliferan en los 

hemocitos de los moluscos, lo que ocasiona ruptura de estos y liberación de los 

parásitos los cuales son nuevamente fagocitados por otros hemocitos (Figueras y 

Novoa, 2011). 

Bonamia ostreae es el agente patógeno que infecta a diversas especies de ostras 

como: Ostrea chilensis, Ostrea pulcheana, Ostrea angasi, Ostrea edulis, causando 



25  

grandes mortalidades en la costa atlántica europea y norteamericana (Figueras y 

Novoa, 2011). 

Este parásito es diagnosticado mediante histología, el cual es observado como como 

una inclusión citoplasmática con un diámetro de 1 – 3 µm (Figueras y Novoa, 

2011). 

3.7.3.3 Phylum Paramyxea 

 

Los parásitos de moluscos bivalvos que pertenecen al Phylum Paramyxea se 

encuentran en el grupo de parásitos de importancia a nivel mundial. Dentro de este 

gran grupo se incluye a dos géneros que afectan a los moluscos: género Marteilia y 

el género Marteiloides. Los parásitos más estudiados son: Marteilia refringens y 

Marteilia sydneyi (Figueras y Novoa, 2011). 

Marteilia sydneyi es la responsable de la enfermedad QX en la ostra Saccostrea 

glomerata mientras Marteilia refringens es el agente que provoca altas 

mortalidades en la ostra plana, Ostrea edulis (Figueras y Novoa, 2011). Este 

parásito ha causado grandes mortalidades conllevando a pérdidas económicas 

importantes en la acuicultura, por eso en la actualidad es un patógeno de declaración 

obligatoria listado por la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE, 2017). 

Marteiliodes branchialis fue descubierta en Australia en Saccostrea glomerata 

(Anderson, Adlard y Lester, 1992), este parásito causa lesiones focales, provocando 

reducción del crecimiento y en algunos casos mortalidad. 

En cuanto al diagnóstico, son parásitos de fácil reconocimiento mediante histología 

o citología. Sin embargo, se pueden usar técnicas moleculares para distinguir las 

especies. Para el correcto diagnóstico de estos parásitos se recomienda uso de 

técnicas de control y vigilancia (OIE, 2017). 



26  

3.7.3.5 Enfermedad causada por Metazoos 

 

Los metazoos que causan daños en los bivalvos cultivados son muy diversos, se 

incluye desde poliquetos hasta helmintos tremátodos. 

3.7.3.5.1 Poliquetos 

 

Este grupo está formado por anélidos que viven en ambientes marinos. La principal 

familia que afecta a los bivalvos es la Spionidae, y dentro de esta familia los 

principales géneros son: Polydora, Dipolydora y Bocardia. Estas especies tienen la 

capacidad de perforar sustratos calcáreos como las valvas de los moluscos (Martin 

y Britayev, 1998). Poseen una distribución mundial en zonas costeras, aunque 

algunas especies están ubicadas solo en algunas áreas (Rohde, 2005). Muchos 

moluscos bivalvos han sido encontrados afectados por estos polidóridos entre ellos: 

Crassostrea spp., Ostrea spp., Saccostrea comerciales, Tioestrea chilensis, Mytilus 

edulis, Ruditapes phillinarum, Chione spp., Mesodesma donacium, Mulinia sp. 

Patinopecten yessoensis, Crassedoma giganteum, Placopecten magellanicus, 

Argopecten purpuratus y Aquipecten tehuelchus. (Boscolo y Giovanardi, 2002; 

Bower y McGladerry, 1994; Cáceres-Martínez, Tinoco, Unzueta-Bustamante y 

Gómez-Humaran, 1999; Ciocco, 1990; Lauckner, 1983; Murina y Solonchenko, 

1991; Oliva y Sánchez, 2005; Radashevsky, Lanay y Nalesso, 2006). 

La mayoría de las infecciones causadas por este tipo de parásitos no causan gran 

daño, especialmente cuando la intensidad es baja y las perforaciones solo se 

encuentran a nivel valvar. (Figueras y Novoa, 2011). En algunos casos los 

problemas son más severos, en Europa se ha registrado en mejillones: mortalidades, 

bajo índice de condición, así como la pérdida de su valor comercial por 



27  

infestaciones con Polydora calcarea (Bower y Mc Gladdery, 1994; Lauckner, 

1983). 

3.7.3.5.2 Turbelarios 

 

Conocidos como planarias, son un grupo de animales que pertenecen al filo 

platelminto. Las especies que se han encontrado en moluscos bivalvos son de la 

familia Urastomidae y Graffilidae (Lauckner, 1983; Rohde, 2005). Los turbelarios 

habitan principalmente el tracto digestivo y las branquias de especies de 

importancia comercial como: Crassostrea virginica, Crassostrea gigas, Ostrea 

edulis, así como también pectínidos, mejillones y almejas. (Bower y Mc Gladery, 

1994). 

Urastoma cyprinae es uno de los parásitos más reportados en branquias de estos 

animales marinos (Rohde, 2005). Si bien antes se consideraba a este parásito como 

un comensal inofensivo, investigaciones posteriores demostraron que es un 

patógeno, el área de branquias afectadas por U. cyprinae muestra necrosis, 

infiltración hemocítica, reducción del espacio entre las lamelas (Robledo, Cáceres- 

Martínez, Sluys y Figueras, 1994). 

3.7.3.5.3 Cestodos larvales 

 

Estos estadios de cestodos han sido reportados en muchos invertebrados marinos, 

así como en peces provenientes de diferentes lugares del mundo. Los adultos 

frecuentemente se encuentran en elasmobranquios. Se conoce muy poco de los 

ciclos de vida de estos parásitos, pero se cree que actuarían como hospedador 

intermediario (Figueras y Novoa, 2011). Las larvas de cestodos que parasitan a 

bivalvos se encuentran en diversas partes del mundo, pero con mayor frecuencia en 

aguas cálidas, esto debido a que los elasmobranquios, hospederos definitivos, 



28  

habitan en estos ambientes (Lauckner, 1983). La mayoría de estudios solo han 

descrito la presencia de los cestodos, pero no han investigado acerca de la patología 

que ocasionan (Figueras y Novoa, 2011). 

3.7.3.5.4 Tremátodos digeneos 

 

Los digeneos en estadio larval son los parásitos metazoos más importantes de los 

moluscos bivalvos debido a que son capaces de provocar severos daños. Los 

moluscos pueden ser primeros o segundos hospederos intermediarios. En el caso 

que actúen como primeros hospederos intermediarios se encontrarán los estadios de 

los tremátodos que se reproducen asexualmente, como es el caso de los 

esporocistos. La infección en estos casos conlleva a la muerte debido a que los 

esporocistos dañan tejidos del hospedador como gónadas (Figueras y Novoa, 2011). 

Si su papel dentro del ciclo evolutivo es ser segundo hospedero intermediario 

albergarán metacercarias que usualmente se encuentran enquistadas. La patología 

que causa depende del parásito y del hospedador, así como de la intensidad 

parasitaria (Figueras y Novoa, 2011). El grado de infección de estos agentes 

patógenos está relacionado con las especies, el ambiente y la estación. Un factor 

determinante para la transmisión de estos parásitos es la presencia de los hospederos 

definitivos que pueden ser peces o aves marinas (Galaktionov y Dobovolskij, 2003; 

Rohde, 2005). 

Los principales digeneos son los de la familia Gymnophallidae, y sus metacercarias 

suelen presentarse en mayor número y con mayores prevalencias que las de otras 

familias. La prevalencia e intensidad está relacionada a la edad de los bivalvos 

(Cremonte, 1999). 



29  

Algunas metacercarias tienen importancia en la salud pública. En Corea existe una 

zoonosis provocada por el consumo de ostras crudas infectadas con metacercarias 

de parásitos pertenecientes a la familia Gymnophallidae (Lee, Chai y Hong, 1993; 

Lee, Sohn, Wong, Hun y Seo, 1996). 

3.7.3.5.5 Nematodos larvales 

 

Estos tipos de parásitos son un grupo muy numeroso y variado, pero no son 

encontrados frecuentemente en moluscos bivalvos. Unas pocas especies de 

Ascaridoidea y Spirurida utilizan a estos organismos como hospederos 

intermediarios. Dentro de los Ascaridoidea, Sulcascaris sulcata es la única especie 

reportada en moluscos bivalvos (Figueiras y Novoa, 2011). Este parásito se 

encuentra distribuido en aguas cálidas, y su estadio adulto parasita el estómago de 

las tortugas Caretta caretta y Chelonia mydas, las cuales adquieren el parásito 

cuando consumen los moluscos bivalvos contaminados (Anderson, 2000). Con 

respecto al grupo de Spirurida, los estadios larvales del género Echinocephalus sp. 

se han encontrado en: Crassostrea gigas, Amusium balloti y abalones, el estadio 

adulto parasita elasmobranquios los cuales adquieren los parásitos cuando 

consumen a los moluscos infectados (Figueiras y Novoa, 2011). 

3.8 ESTADO SANITARIO DE MOLUSCOS BIVALVOS 

 

El Estado, a través del Servicio Nacional de Sanidad (SANIPES), es la autoridad 

competente en el tema sanitario y el ente encargado de evaluar la calidad de los 

productos pesqueros derivados de la acuicultura. Es así que en el 2004 se aprueba 

la “Norma Sanitaria de Moluscos Bivalvos Vivos” con el decreto supremo N°07- 

2004. El cual tiene por objetivo regular las condiciones y requisitos de seguridad 

sanitaria y de calidad que deben reunir los moluscos bivalvos destinados 



30  

directamente al comercio o a su procesamiento para consumo humano, incluyendo 

los requisitos para las áreas de extracción o recolección y para las concesiones 

acuícolas (DECRETO SUPREMO Nº 07-2004-PRODUCE) 

Hasta la actualidad en el país no se han publicado estudios del estado sanitario de 

los moluscos bivalvos. En países desarrollados existen programas de control y 

vigilancia de las enfermedades propias de moluscos, que en su mayoría son 

enfermedades de origen parasitarios. La OIE recomienda realizar estudio de brotes 

o procedimientos de vigilancias de enfermedades en los moluscos para tener 

información zoosanitaria significativa de los animales acuáticos (OIE, 2017). 



31  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

IV. JUSTIFICACIÓN DEL ESTUDIO 

 

Se conoce poco del estatus sanitario de las conchas de abanico (Argopecten 

purpuratus), que son moluscos cultivados en zonas del litoral peruano y vendidos 

no solo a nivel nacional sino también internacional, es por ello que es necesario 

conocer los agentes parasitarios y las lesiones histopatológicas ocasionadas por 

estos agentes con el fin de establecer programas de prevención y control de 

enfermedades en los centros de cultivos evitando las pérdidas económicas causadas 

por efectos de alguna infección en esta especie acuícola y posibles restricciones 

comerciales al ser algunos de estos agentes parasitarios de reporte obligatorio ante 

la OIE. 



32  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

V. OBJETIVOS DEL ESTUDIO 

 

5.1 OBJETIVO GENERAL 

 

Detectar los agentes parasitarios y describir las lesiones histopatológicas en la 

concha de abanico (Argopecten purpuratus) procedentes de Áncash-Perú en 

periodo de verano e invierno. 

5.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS 

 

Detectar la presencia de los agentes parasitarios presentes en la concha de abanico 

procedente de ambientes naturales y centros de producción en el periodo de verano 

e invierno mediante histología. 

Caracterizar todas las lesiones presentes en la concha de abanico procedente de 

ambientes naturales y centros de producción en el periodo de verano e invierno 

mediante histología. 

Comparar la prevalencia de los parásitos y las lesiones encontradas entre la estación 

de verano y la estación de invierno. 

Comparar la prevalencia de los parásitos y las lesiones encontradas entre población 

de ambientes naturales y los de producción. 



33  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

VI. METODOLOGÍA 

 

6.1 DISEÑO DEL ESTUDIO 

 

El presente estudio es de tipo longitudinal analítico, cuyas variables independientes 

vienen a ser factores asociados a la presencia de parásitos y lesiones como: el 

período de estación y la procedencia. La variable dependiente es la frecuencia de 

parásitos y lesiones en las conchas de abanico. 

6.2 POBLACIÓN Y MUESTRA 

 

Este estudio se desarrolló utilizando muestras de conchas de abanico (Argopecten 

purpuratus) de vida libre, así como los de producción, ambos grupos provenían de 

la bahía de Samanco en la ciudad de Chimbote, Región Áncash en Perú. 

Las muestras fueron procesadas en el laboratorio de Histología y Parasitología de 

la Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Peruana Cayetano Heredia. 

Se muestrearon 90 moluscos de la especie concha de abanico (Argopecten 

purpuratus) por grupo, considerando 4 grupos (conchas de abanico de Ambiente 

natural en Verano, conchas de abanico de Ambiente natural en Invierno, conchas 

de abanico de Producción en Verano y conchas de abanico en Invierno), resultando 

en total 360 animales. 



34  

El tamaño de muestra por grupo se basó en una frecuencia de 50% de casos 

esperados, como escenario conservador, un nivel de confianza de 95% y un error 

aceptado del 10%. 

6.3 PROCEDIMIENTOS Y TÉCNICAS 

 
6.3.1 Toma de muestra 

 
Los moluscos procedentes de Áncash fueron recolectados sin distinguir individuos 

clínicamente enfermos de individuos sanos de los dos grupos, el primero 

proveniente de centros productivos y el otro de animales de vida libre, se realizó la 

colección de los especímenes tomando en cuenta la estacionalidad de verano (enero, 

febrero y mazo) e invierno (junio, julio y agosto) del año 2017. En general podemos 

decir que a lo largo de la costa se presenta pocas precipitaciones, por lo que se 

decidió separar a los animales en dos grupos con respecto a la temperatura (verano 

e invierno) y no a la presencia de lluvia (época seca y época húmeda). (SENAMHI, 

2018). Para el muestreo de animales de zonas de producción, se tomó animales de 

linternas provenientes de 3 empresas dedicadas al cultivo de concha de abanico, en 

el caso de los animales silvestres, estos fueron extraídos de su medio natural 

mediante buceo. 

Hubo diferencia en las tallas encontradas en los dos grupos de procedencia, los 

animales de producción presentaron tallas más uniformes, con un rango de 59 mm 

-77 mm, en el caso de los animales de medio natural hubo una desuniformidad 

notoria presentando un rango que va de 42mm a 90 mm. Esto es debido a que los 

centros de producción manejan animales promedio los cuales cumplen con ciertas 

medidas biométricas como talla y peso, esto no ocurre en el medio natural, en el 

cual los animales tienen tallas y pesos diferentes entre sí. 



35  

Los animales cuanto antes de ser extraídos del agua, para evitar la descomposición 

del tejido, fueron conservados en cajas de poliestireno que contenían packs de hielo, 

estas cajas se encontraban bien rotuladas y completamente cerradas para proteger a 

los moluscos del ingreso del sol y el viento evitando así la deshidratación (OIE, 

2017). Las muestras fueron transportadas al laboratorio de Parasitología e 

histopatología de la Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Peruana 

Cayetano Heredia. 

6.4.2 Evaluación de los parámetros fisicoquímicos del agua 

 

Se evaluó el factor medioambiental determinando 4 propiedades fisicoquímicas del 

agua como: temperatura, pH, oxígeno y salinidad. Se utilizó el equipo 

multiparámetro portátil Hanna Hi 9828 para la evaluación en todos los meses en los 

cuales se muestreó a las conchas de abanico; es decir en enero, febrero y marzo 

(temporada de verano) y junio, julio y agosto (temporada de invierno). 

6.3.3 Determinación de la biometría 

 

Con objetivo de determinar diferencias en las medidas biométricas de la concha de 

abanico se tomaron en cuenta la procedencia (banco natural y producción), la 

estación (verano e invierno) así como la presencia de parásitos. Se estimaron el peso 

total (PT) (incluyendo las valvas), el peso solo de los órganos, la altura valvar (L) 

y el factor de condición (K). Para determinar la altura valvar se utilizó el vernier y 

para los pesos se usó una balanza sensible en gramos. El factor de condición o la 

condición de Fulton (K) se halló usando la relación entre el peso y la longitud 

(Froese, 2006). 



36  

 

 
 

Donde (PT) representa: Peso total, (L) representa: altura valvar. 

 
6.3.4 Evaluación Macroscópica 

 

Se evaluó a nivel macroscópico los diferentes órganos en búsqueda de alguna lesión 

evidente, así como la presencia de parásitos que los afecten. El primer órgano que 

se observó fue la valva, luego se procedió a abrir cuidadosamente las valvas y 

observar in situ para finalmente evaluar minuciosamente cada uno de los órganos 

internos (gónada femenina, gónada masculina, manto, branquias, nefridios y tracto 

digestivo). Se pudo observar cambio en la coloración de los órganos, branquias 

erosionadas o sucias, edema, abscesos, malformaciones calcáreas (Howard, Lewis, 

Keller y Smith, 2004). 

6.3.5 Estudio Histopatológico 

 

Se dividió a la muestra en tres partes mediante dos cortes paralelos, donde la región 

central fue llevada para estudio histopatológico, de esta manera se logra tener una 

porción de muestra que incluye los órganos internos de moluscos bivalvos del 

género Argopecten sp, esta sección incluye órganos como: gónada femenina, 

gónada masculina, manto, branquias, nefridios y tracto digestivo; esta técnica es 

descrita en el libro “Técnicas histológicas para moluscos bivalvos marinos y 

crustáceos del Centro Nacional de Ciencias del Océano Costero de los Estados 

Unidos de Norteamérica” (Howard, Lewis, Keller y Smith, 2004). 

Todas las muestras fueron puestas en frascos debidamente rotulados que contenían 

el fijador liquido de Davidson, luego de 24 horas las muestras fueron puestas en 

alcohol de 50°C hasta su procesamiento (OIE, 2017). 

𝐿3 
𝐾 = 

𝑃𝑇 
𝑥 100 



37  

Las muestras fueron procesadas en láminas mediante el método convencional 

histológico para tejidos fijados. Los cortes tuvieron un grosor de 5 µm y se tiñeron 

con hematoxilina y eosina (Shaw y Battle, 1957). En las 360 láminas se observó 

los tejidos mediante el uso del microscopio óptico con un aumento de 40X, 100X y 

400X. Se determinó e interpretó las lesiones histopatológicas y finalmente para la 

obtención de las fotos se usó el programa Leyca mycrosistems. 

Las lesiones histopatológicas fueron clasificadas de acuerdo al grado de afección 

por su extensión en el tejido evaluado presentándose en una escala de grados que 

va de 1-4 (Reimshuessel, May, Bennet y Lypsky, 1992), con la finalidad de hacer 

una evaluación más objetiva. Los parámetros tomados en cuenta figuran en la tabla 

2. 



38  

𝑛° 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑎𝑛𝑖𝑚𝑎𝑙𝑒𝑠 
𝑓 = 

𝑛° 𝑑𝑒 𝐴𝑛𝑖𝑚𝑎𝑙𝑒𝑠 𝑐𝑜𝑛 𝑋 
𝑥 100%

 

Tabla 2. Diferencia de grados de lesiones en tejidos según su extensión en la muestra (Reimshuessel 
 

et al., 1992). 
 
 

Grado Extensión 

I (Escaso) 
Escasa presencia de lesión, hasta un 25% 

aproximadamente en toda la muestra estudiada 

II (Leve) 
Presencia de lesión en más del 25% pero 

menor del 50% de toda la muestra en estudio 

III (Moderado) 
Lesiones encontradas en más del 50% pero 

menores a un 75% de la muestra estudiada 

IV (severo) 
Afección en más del 75% y llegando incluso al 

100% de la muestra en estudio. 

 

 

Los resultados fueron presentados con el análisis de frecuencia, indicando el 

porcentaje de cada variable con respecto al total de población analizada y se graficó 

estos resultados obtenidos en tablas de porcentajes. 

La frecuencia fue determinada mediante la fórmula: 

 

Donde (x) representa: Una lesión histopatológica determinada. 

 
6.3.6 Plan de análisis 

 

Con la información obtenida se creó una base de datos para ser usada en el análisis 

estadístico. Los datos fueron analizados con la prueba estadística de Ji Cuadrado 

para demostrar si hay asociación entre el lugar de procedencia, lesiones 

histopatológicas y los agentes parasitarios encontrados, así como también la 

relación de estos últimos con la estación del año (verano e invierno). 



39  

6.3.7 Consideraciones éticas 

 

Se trabajó las muestras con la debida autorización de las concesionarias de conchas 

de cultivo, a su vez se contempló las normas éticas para la investigación señaladas 

por el Comité de Ética de la Universidad Peruana Cayetano Heredia. 



40  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 
 

VII. RESULTADOS 

 

7.1 Parámetros fisicoquímicos del agua 

 
 

Se midieron los parámetros fisicoquímicos en 6 momentos durante los meses de 

verano (enero, febrero y marzo), en el mes de febrero se obtuvo la temperatura más 

alta con 25.76 °C y la mayor cantidad de oxígeno disuelto se encontró en el mes de 

enero, el cual fue: 8.71 ml/L (Tabla 3). 



41  

Tabla 3. Evaluación Mensual de los parámetros fisicoquímicos del agua de la bahía de Casma en 

Áncash-Perú evaluados en la temporada de verano. 

 
 

 

 
Estación 

 

 
Mes 

 
Número de 

Medición 

 
Temperatura 

(°C) 

 

 
Salinidad 

(ups) 

 
Promedio 

pH 

Promedio 

Oxígeno 

disuelto 

(ml/L) 

  1 16.85 33.28 8 6.84 

  2 16.9 33.29 8.08 6.91 

  3 21.83 33.27 8.27 8.54 

 Enero 
4 21.54 33.24 8.25 8.71 

  5 16.93 33.20 7.97 4.3 

  6 20.8 33.24 8.3 8.67 

  1 25.01 33.29 7.74 5.16 

  2 25.22 33.22 8.25 5.32 

Verano 
 3 24.54 33.33 7.77 5.21 

 
Febrero 4 25.76 33.25 8.22 6.4 

  5 24.8 33.27 8.26 5.61 

  6 25.22 33.25 8.3 5.81 

  1 16.85 33.28 8 6.84 

  2 24.41 33.12 8.13 6.54 

 Marzo 3 24.41 33.12 8.13 6.54 

  4 26 32.98 8.36 7.43 

  5 25.51 33.01 8.36 7.23 

  6 25.3 33 8.25 7.1 

 

 

 

 
Para el caso de los meses de verano (junio, julio y agosto) también se midieron los 

parámetros fisicoquímicos en 6 momentos, se obtuvo la temperatura más baja con 

17.67 °C en el mes de agosto y la mayor cantidad de oxígeno disuelto se encontró 

también en el mes de agosto, el cual fue:11.38 ml/L (Tabla 4). 



42  

Tabla 4. Evaluación Mensual de los parámetros fisicoquímicos del agua de la bahía de Casma en 

Áncash-Perú evaluados en la temporada de invierno. 

 

 

 
Estación 

 

 
Mes 

 
Número de 

Medición 

 
Temperatura 

(°C) 

 

 
Salinidad 

(ups) 

 
Promedio 

pH 

Promedio 

Oxígeno 

disuelto 

(ml/L) 

  1 19.9 35.06 8.39 7.69 

  2 19.85 35.05 8.41 8.9 

  3 19.72 35.04 8.41 9.01 

 Junio 
4 19.63 35.05 8.41 9 

  5 19.54 35.04 8.48 9.57 

  6 19.35 35.08 8.35 7.08 

  1 19.13 33.25 8.324 7.55 

  2 19.36 33.29 8.31 8.06 

Invierno 
 3 19.38 33.29 8.45 7.73 

 
Julio 4 18.81 33.28 8.51 9.55 

  5 18.5 33.27 8.47 9.6 

  6 19.09 33.29 8.49 8.87 

  1 18.56 33.25 8.18 8.62 

  2 18.28 33.26 8.51 8.88 

 Agosto 3 17.77 33.25 8.63 9.19 

  4 17.72 33.26 8.51 8.51 

  5 17.67 33.24 9.49 11.38 

  6 17.72 33.24 9.31 11.25 

 

 

 
Para el caso de los promedios se observó la relación inversamente proporcional de 

la temperatura y el oxígeno disuelto, como se observa en la figura 8, los meses más 

cálidos (enero, febrero y marzo) presentaron menor cantidad de oxígeno disuelto y 

en el caso de los meses fríos (junio, julio y agosto) la cantidad de oxígeno disuelto 

se encontró en mayor cantidad (Tabla 5). 



43  

5.58 

 

Tabla 5. Promedio y desviación estándar de los parámetros fisicoquímicos del agua de la bahía de 

Casma en Áncash-Perú evaluados en la temporada de verano e invierno. 

 

 
 

 

Estación 

 

Mes 

 

 
Temperatura 

(°C) 

 

DE 

Temperatura 

(°C) 

 

 
Salinidad 

(ups) 

 

DE 

Salinidad 

(ups) 

 
 

pH 

 

DE 

pH 

 

Oxígeno 

disuelto 

(ml/L) 

DE 

Oxígeno 

disuelto 

(ml/L) 

 Enero 19.14 2.45 33.25 0.03 8.14 0.14 7.32 1.71 

Verano Febrero 25.09 0.41 33.26 0.03 8.09 0.26 5.58 0.47 

 Marzo 23.74 3.43 33.08 0.11 8.20 0.14 6.94 0.36 

 

 
Invierno 

Junio 19.66 0.20 35.05 0.01 8.40 0.04 8.54 0.94 

Julio 19.04 0.33 33.27 0.01 8.42 0.08 8.56 0.90 

Agosto 17.95 0.37 33.25 0.008 8.77 0.51 9.63 1.32 

 

 
 
 

Promedio Oxígeno disuelto (ml/L) Promedio Temperatura (°C) 

 

 

 
 

19.14 
25.09 23.74 19.66 19.04 17.95 

 

 

 

 
 

7.32 6.94 8.54 8.56 9.63
 

 

Enero Febrero Marzo Junio Julio Agosto 

 
 
 

Figura 8. Relación de la Temperatura y el oxígeno disuelto en los meses de verano e invierno del 

agua de la bahía de Casma en Áncash-Perú 



44  

 

 
 

 

 

 
Figura 9. Promedio y desviación estándar de los parámetros fisicoquímicos en todos los meses. 

 

 

7.2 Biométricos 

 

Hubo diferencia en las tallas encontradas en los dos grupos de procedencia, los 

animales de producción presentaron tallas más uniformes, con un rango de 59 mm 

-77 mm, en el caso de los animales de medio natural hubo una desuniformidad 

notoria presentando un rango que va de 42mm a 90 mm. Esto es debido a que los 

centros de producción manejan animales promedio los cuales cumplen con ciertas 

medidas biométricas como talla y peso, esto no ocurre en el medio natural, en el 

cual los animales tienen tallas y pesos diferentes entre sí. 

Con respecto al promedio de los datos biométricos de las conchas de abanico se 

observa que los individuos más grandes y más pesados se obtuvieron del grupo 

proveniente de Producción en la estación de Invierno y en su contraparte se 

40 

35 

30 

25 

20 

15 

10 

5 

0  
promedio  promedio 

Temperatura (°C) Salinidad (ups) 

Enero 19.14 33.25 

Febrero 25.09 33.26 

Marzo 23.74 33.08 

Junio 19.66 35.05 

Julio 19.04 33.27 

Agosto 17.95 33.25 

promedio pH 

8.14 

8.09 

8.2 

8.4 

8.42 

8.77 

promedio 

oxígeno disuelto 

(ml/L) 

7.32 

5.58 

6.94 

8.54 

8.56 

9.63 

σ: 1.44 σ: 0.25 

σ: 2.91 

σ: 0.75 



45  

encontró moluscos bivalvos más pequeños y menos pesados en el grupo de 

Ambiente natural de la estación de Invierno (Tabla 6). El factor de condición el cual 

es un dato importante, ya que permite relacionar el tamaño y peso de los individuos, 

mostró que el grupo proveniente de Ambiente natural en estación de invierno, el 

cual tenía como promedio menor tamaño tenía una mejor condición (Figura 9). 

 
 

Tabla 6. Promedio de datos biométricos de las conchas de abanico de Áncash-Perú tomando en 

cuenta el lugar de procedencia (Ambiente natural y Producción), así como la temporada (Verano e 

Invierno). 

 

Grupo de 

conchas de 

abanico 

 
peso 

neto (gr) 

 

DE 

peso 

neto (gr) 

peso 

órganos 

interno 

(gr) 

DE peso 

órganos 

interno 

(gr) 

 

 
altura 

valvar 

(mm) 

DE 

altura 

valvar 

(mm) 

 
 

FC 

 
DE 

FC 

Verano - 

Producción 
48.96 4.43 21.82 2.49 69.34 0.26 14.77 1.81 

Verano - 

Ambiente 
natural 

 

42.87 
 

20.76 
 

14.23 
 

6.95 
 

61.13 
 

7.75 
 

17.88 
 

3.36 

Invierno - 

Producción 
56.75 9.36 27.20 5.18 68.67 3.80 17.53 2.34 

Invierno - 

Ambiente 
natural 

 

39.76 
 

8.37 
 

14.17 
 

3.23 
 

58.42 
 

4.22 
 

19.85 
 

2.51 



46  

Figura 10. Relación de la altura valvar y el peso total con el Factor de condición (FC) según los 

diferentes grupos de procedencia. 

 

 

 

Promedio altura valvar (mm) Promedio peso neto (gr) promedio FC 

 

 

 
 

69.34 

 
48.96 

 

61.13 

 
42.87 

68.67 
 

56.75 

 
 

58.42 

 
39.76 

 

14.77 17.88 17.53 
19.85

 

Verano - Producción Verano - Ambiente 
natural 

Invierno - Producción Inviernto - Ambiente 
Natural 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

Figura 11. Relación de la altura valvar y el peso total con el Factor de condición (FC) según los 

diferentes grupos de procedencia. 

80 
70 
60 
50 
40 
30 
20 
10 
0 

σ: 2.91 

σ: 7.49 

σ: 2.91 σ: 2.91 

Prom. Peso 

Neto (gr) 

PRO - VER 48.96 

NAT - VER 42.87 

PRO - INV 56.75 

NAT - INV 39.76 

Prom. Peso 

organos internos 
Prom. altura 

(gr) 
valvar (mm) 

21.82 69.34 

14.23 61.13 

27.2 68.67 

14.17 58.42 

Prom. Factor de 

Condición (K) 

14.77 

17.87 

17.53 

19.85 



47  

Se muestra los datos biométricos extremos para tomar en cuenta el rango de los 

resultados obtenidos en cada grupo muestreado y los datos individuales extremos 

en cada grupo. De esta manera observamos que el animal más grande y con mayor 

peso fue encontrado en el grupo de animales de Ambiente natural en Verano, con 

respecto al caso contrario: el animal más pequeño y con menor peso fue encontrado 

también en el mismo grupo, es decir en Ambiente natural de Verano (Tabla 7). 

 
 

Tabla 7. Datos biométricos extremos (mayor y menor) de las conchas de abanico en Áncash-Perú 

tomando en cuenta el lugar de procedencia (ambiente natural y producción), así como la temporada 

(verano e invierno). 

 
 

Grupo de 

conchas de 

abanico 

 
Mayor 

peso 

neto (gr) 

 
Menor 

peso 

neto (gr) 

Mayor 

peso 

órganos 

interno 

(gr) 

Menor 

peso 

órganos 

interno 

(gr) 

Mayor 

altura 

valvar 

(mm) 

Menor 

altura 

valvar 

(mm) 

 
Mayor 

FC 

 
Menor 

FC 

Verano - 

Producción 
58.8 38.79 27.29 15.71 77 64 19.6 11.14 

Verano - 

Ambiente 
natural 

 

141.75 
 

15.27 
 

40.34 
 

5.3 
 

90 
 

42 
 

31.29 
 

12.28 

Invierno - 

Producción 
78.2 40.4 42.57 17.3 78 59 24.91 12.71 

Invierno - 

Ambiente 
natural 

 

63.6 
 

27.46 
 

24.1 
 

9.14 
 

75 
 

51 
 

26.69 
 

10.54 



48  

7.3 Observaciones Macroscópicas 

 

A nivel macroscópico se observó un número elevado de Polydora sp. en las conchas 

de abanico de los 4 grupos y sólo un pequeño número de conchas de abanico del 

grupo de Invierno – Ambiente natural presentó pequeñas manchas blanquecinas en 

sus órganos internos 

 
 

Tabla 8. Hallazgos a nivel macroscópico de las conchas de abanico en Áncash-Perú tomando en 

cuenta el lugar de procedencia (ambiente natural y producción), así como la temporada (verano e 

invierno). 

 
 

Observaciones a 

nivel 
macroscópico 

Verano - 

Producción 

Verano - 

Ambiente 
natural 

Invierno - 

Producción 

Invierno - 

Ambiente 
natural 

Polydora sp. 84 90 85 90 

Hydroides sp. 3 1 4 3 

Perforación en las 

valvas 
0 4 0 3 

Pequeñas 

manchas 

blanquecinas en 
gónadas sexuales 

 
0 

 
0 

 
0 

 
3 

 

 
Con relación a los porcentajes, se encontró que el 100% de las conchas de abanico 

que provenían de ambientes naturales presentaban Polydoras sp. independiente de 

la estación, en el grupo Invierno – Ambiente natural se presentaron diversos 

hallazgos como: presencia de Hydroides sp., perforación en las valvas y pequeñas 

manchas blanquecinas (Figura 11), todos con un porcentaje de presentación mínima 

(Figura 10). 



49 

Polydora sp. 

Hydroides sp. 

Perforación en las valvas 

Pequeñas manchas blanquecinas en gónadas sexuales 

100% 

84 

100 % 
85 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 
 

3.3 % 4.4 % 
1.1 % 

4.4 % 
.3 % 3.3 % 3.3 % 

 

Verano - Producción Verano - Ambiente 
natural 

Invierno - Producción Invierno - Ambiente 
natural 

 

 

Figura 12. Porcentaje (%) de hallazgos a nivel macroscópico de las conchas de abanico en Áncash- 

Perú tomando en cuenta el lugar de procedencia (ambiente natural y producción), así como la 

temporada (verano e invierno) 

Figura 13. Hallazgos a nivel 

macroscópico. (A) Manchas 

blanquecinas en gónadas 

A 
B 

8flechas azules).  (B) Hydroides 
 
sp.   encontrado   en   concha de 

abanico (Argopecten 

purpuratus).   (C) Perforaciones 
 

en   el   interior   de   las   valvas 

 

(flechas rojas). (D) Polydora sp. 

C D extraído de una concha de 

3 



50  

7.4 Histopatológicos 

 

7.4.1 Branquias 

 

Con respecto a las branquias de las conchas de abanico, se observa que en los 4 

grupos la alteración más frecuente es la infiltración hemocítica y la necrosis 

(Figuras 13, 14, 15, 16, 18, 19, 20, 21, 22 y 23), otra alteración observada en todos 

los grupo fue: La presencia de ooquistes de Nematopsis sp. y los RLOs (Organismos 

tipo rickettsiales) (Figuras 13, 14, 15 y 16), con respecto a la presencia de estos 

últimos se encontró que el grupo de verano – Producción tenía la mayor prevalencia 

con respecto a los otros grupos. (Tabla 9, 10, 11 y 12), en este mismo grupo se 

observó hiperplasia del tejido branquial (Figura 13). También se encontró 

tremátodos en el grupo de invierno – Ambiente natural (Figura 17). 

 
 

Tabla  9.   Frecuencia  de  alteraciones  histológicas  de  las  branquias  y su  grado  de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

 
 

 
HALLAZGOS 

ENCONTRADO 

S BRANQUIAS 

 

GRADO DE LESIÓN 

 
ALTERACIÓ 

N 

Norma 

l 

Escas 

o 

Lev 

e 

Moderad 

o 

Sever 

o 
Total % 

Infiltración 

hemocítica 
17 1 21 42 9 

73/9 

0 
81.1 

Nematopsis sp. 39 40 8 3 0 
51/9 

0 
56.6 

RLOs 

(Organismo tipo 

rickettsiales) 

 

68 

 

9 

 

13 

 

0 

 

0 
22/9 

0 

 

24.4 

Necrosis 29 1 27 27 6 
61/9 

0 
67.7 

Hiperplasia del 

epitelio branquial 
86 1 3 0 0 4/90 4.4 



51  

Tabla 10. Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de ambientes naturales de Áncash - Perú en período de verano. 

 

 
HALLAZGOS 

ENCONTRADO 

S BRANQUIAS 

 

GRADO DE LESIÓN 

 
ALTERACIÓ 

N 

Norma 
l 

Escas 
o 

Lev 
e 

Moderad 
o 

Sever 
o 

Total % 

Infiltración 

hemocítica 
7 8 21 48 6 

83/9 
0 

92.2 

RLOs 

(Organismo tipo 

rickettsiales) 

 

77 

 

10 

 

3 

 

0 

 

0 
13/9 

0 

 

14.4 

Necrosis 7 12 32 36 3 
83/9 

0 
92.2 

Células 

vacuoladas 
83 6 1 0 0 7/90 7.7 

 

 

 
 

 

 

 
Tabla 11. Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de afección en 

Argopecten purpuratus procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de 

invierno. 

 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

BRANQUIAS 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

Infiltración 

hemocítica 
19 29 19 23 0 71/90 78.8 

Nematopsis sp. 89 1 0 0 0 1/90 1.1 

RLOs (Organismo 

tipo rickettsiales) 
85 5 0 0 0 5/90 5.5 

Necrosis 19 34 23 14 0 71/90 78.8 

 



52  

Tabla 12.   Frecuencia de alteraciones histológicas de las branquias y su grado de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de ambientes naturales de Áncash - Perú en período de invierno, 
 

 

 

 

 

 

 
HALLAZGOS 

ENCONTRADO 

S BRANQUIAS 

 

GRADO DE LESIÓN 

 
ALTERACIÓ 

N 

Norma 

l 

Escas 

o 

Lev 

e 

Moderad 

o 

Sever 

o 
Total % 

Infiltración 

hemocítica 
8 10 12 59 1 

82/9 

0 
91.1 

RLOs 

(Organismo tipo 

rickettsiales) 

 

77 

 

10 

 

3 

 

0 

 

0 
13/9 

0 

 

14.4 

Necrosis 8 18 27 36 1 
82/9 

0 
91.1 

Nematopsis sp. 80 9 1 0 0 
10/9 

0 
11.1 

Tremátodo 87 3 0 0 0 3/90 3.3 

 

 

 

 

 

 

 
 

 

 
 

Figura 14. Hiperplasia 

del epitelio branquial 

(Circulo negro). H&E 

400X. 



53  

 

 

 

 
 

 

 

 
 

 
 
 

Figuras 15, 16, 17 y 18 (RLOs) Organismos tipo Rickettsiales en tejido branquial (Círculo rojo). Áreas de 

necrosis del tejido (Flechas azules). H&E 400X. 

 

 

 

 
Figura 19. Tremátodo entre los 

filamentos branquiales (Círculo 

amarillo). Áreas de necrosis 

del tejido (Flechas azules). 

Leve infiltración hemocítica 

(Círculo verde). H&E 400X. 



54  

 

 

 

 

 
 

 
 

Figura 20. Infiltración 

hemocítica (círculos verdes) y 

RLOs dentro del filamento 

branquial (Círculo rojo). H&E 

400X. 

Figura 21. Infiltración hemocítica 

(círculos verdes), RLOs dentro del 

filamento branquial (Círculo rojo) y 

necrosis del epitelio. H&E 400X. 



55  

 

 

 

 

 

 

 

 
 

 Figuras 22, 23, 24 y 25. Infiltración hemocítica (Círculos verdes). H&E 400X. 



56  

7.4.2 Gónada masculina 

 

Con respecto a la gónada masculina, se encontró que el porcentaje de las lesiones fue 

mínimo (tablas 13, 14 y 16), excepto en el grupo de Invierno - Producción, donde se 

observó atrofia (Figura 25) en un 15.5% (tabla 15). Otro resultado hallado fue que en los 

dos grupos de verano (producción y ambiente natural) se encontró necrosis e infiltración 

hemocítica (Figuras 24 y 26), lesiones que no fueron encontradas en los grupos de 

invierno. 

 

Tabla 13. Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su grado de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

 

 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA 

MASCULINA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

 

Atrofia 

 

89 

 

0 

 

1 

 

0 

 

0 

 

1/90 

 

1.1 

 

Nematopsis sp. 

 

86 

 

4 

 

0 

 

0 

 

0 

 

4/90 

 

4.4 

 

Necrosis 

 

89 

 

0 

 

1 

 

0 

 

0 

 

1/90 

 

1.1 

 

Infiltración hemocítica 

 

89 

 

0 

 

1 

 

0 

 

0 

 

1/90 

 

1.1 



57  

Tabla 14. Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su grado de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de verano. 

 

 

 
 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA 

MASCULINA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

 

Atrofia 

 

87 

 

3 

 

0 

 

0 

 

0 

 

3/90 

 

3.3 

 

Necrosis 

 

86 

 

1 

 

3 

 

0 

 

0 

 

4/90 

 

4.4 

 

Infiltración hemocítica 

 

86 
 

4 
 

0 
 

0 
 

0 
 

4/90 
 

4.4 

 
 

Tabla 15. Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su grado de afección en 

 

Argopecten purpuratus procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de invierno. 

 

 

 
 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA 

MASCULINA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

 

Atrofia 

 

76 

 

14 

 

0 

 

0 

 

0 

 

14/90 

 

15.5 

 
 

Tabla 16. Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas masculinas y su grado de afección en 

 

Argopecten purpuratus procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de verano. 
 

 

 

 
 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA 

MASCULINA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

 

Atrofia 

 

88 

 

2 

 

0 

 

0 

 

0 

 

2/90 

 

2.2 



58  

 

 

  
 

 

 

 

Figura 26. Infiltración 

hemocítica en Gónada sexual 

masculina (Círculo verde). H&E 

400X. 

B 
A 

Figuras 27. Atrofia de la gónada masculina. (Se observan zonas donde no existe tejido). H&E (A) 100X y (B) 400X. 



59  

 
 

 
 

 

 

7.4.3 Gónada femenina 

 

En caso de la gónada femenina se observa que todos los grupos presentan atrofia (Figura 

 

28) (tablas 17, 18, 19 y 20), donde resalta el grupo de Invierno – Producción con un 

porcentaje de 38.8% (tabla 19). Se observó infiltración hemocítica (Figura 27) y necrosis 

(Figura 29) en los dos grupos de verano (producción y ambiente natural), al mismo tiempo 

se encontró tremátodos (Figuras 30 y 31 ) en ambos grupos que provenían de ambiente 

natural (verano e invierno). 

Figura 28. Áreas de Necrosis 

(flechas azules) en Gónada 

masculina. H&E 400X. 



60  

Tabla 17. Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su grado de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de centros de producción de Áncash - Perú en período de verano. 

 

 
 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA FEMENIDA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

Atrofia 87 0 3 0 0 3/90 3.3 

Nematopsis sp. 86 1 3 0 0 4/90 4.4 

Necrosis 89 0 1 0 0 1/90 1.1 

Infiltración hemocítica 89 0 1 0 0 1/90 1.1 

 

 

 

Tabla 18. Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su grado de afección en 

 

Argopecten purpuratus procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de verano. 

 

 

 
 

 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA FEMENIDA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

Atrofia 84 5 0 1 0 6/90 6.6 

Necrosis 84 1 1 4 0 6/90 6.6 

Tremátodos 89 1 0 0 0 1/90 1.1 

Infiltración hemocítica 86 4 0 0 0 4/90 4.4 



61  

Tabla 19.  Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su grado de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de centros de producción  de Áncash - Perú en período de invierno. 

 

 

 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA 

FEMENIDA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

Atrofia 55 35 0 0 0 35/90 38.8 

 
 

Tabla 20. Frecuencia de alteraciones histológicas de las gónadas femeninas y su grado de afección en 
 

Argopecten purpuratus procedente de ambiente natural de Áncash - Perú en período de invierno. 

 

 

 

 
 

HALLAZGOS 

ENCONTRADOS 

GÓNADA FEMENIDA 

 

GRADO DE LESIÓN 

 

ALTERACIÓN 

Normal Escaso Leve Moderado Severo Total % 

Atrofia 89 0 1 0 0 1/90 1.1 

Necrosis 88 2 0 0 0 2/90 2.2 

Tremátodos 89 1 0 0 0 1/90 1.1 

Nematopsis sp. 89 1 0 0 0 1/90 1.1 

 

 

Figura 29. Infiltración 

hemocítica (Círculo verde) en 

gónada femenina. H&E 400X. 



62  

 
 

 

 
 

 

A B 

Figuras 30. Atrofia de la gónada masculina. (Se observan zonas donde no existe tejido). H&E (A) 

100X y (B) 400X. 

Figura 31. Necrosis de la gónada femenina. H&E 400X. 



63  

 

 

 

 
 

 
 

 
 

 

Figura 32. Tremátodo (Círculo azul) y atrofia en la gónada femenina. H&E 400X. 

Figura 33. Tremátodo (Círculo azul) y atrofia en la gónada femenina. H&E 400X. H&E 400X. 



64  

 

7.4.4 Músculo aductor 

 

En caso del músculo aductor, todos los grupos presentaron un porcentaje considerable de 

necrosis (Tablas 21, 22, 23 y 24) (Figura 35). Se encontró que 28.8% de las muestras del 

grupo de verano- producción presentó ooquistes de Nematopsis sp. (Figuras 32, 33 y 35) 

(Tabla 21), se encontró células vacuoladas (Figura 34) en el grupo de verano-ambiente 

natural. Otro hallazgo importante fue la infiltración hemocítica (figura 35). 

 

Tabla 21. Frecuencia de alteraciones histológicas de músculo aductor y su grado de afección en Argopecten 

purpuratus procedente de centros d